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1、人粒细胞无形体病实验室检测方案（试行）为保证及时、科学地采集、运送人粒细胞无形体病病例（包括疑似病例）及疫源地调查的各种类型标本，规范人粒细胞无形体病的实验室检测程序，提高检测质量，为明确诊断或开展相关的科学研究提供实验室依据，特制定本方案。一、样本采集对象（1） 人粒细胞无形体病病例（包括疑似病例，以下同） 。（2） 病例密切接触者或其他健康人群。（3） 疫源地可疑宿主动物（野生动物及狗、羊、牛等家畜） 、媒介蜱。二、标本种类及采集方法（一） 抗凝血。常用 EDTA 抗凝管或枸橼酸盐抗凝管采集血液5ml ，用于病原分离。应尽可能在病人使用抗生素前进行血液的采集。（二）非抗凝血。用无菌真空管，
2、采集病例、健康人群及宿主动物非抗凝血 5ml ，用于血清抗体及PCR 检测。采集后，应及时分离血清，将血清、血球分别保存。急性期抗体及PCR 检测用血液采集尽可能在发病后1 周内，恢复期抗体检测标本采集至少间隔2-3 周。如第2 份血清在1 个月之内抗体升高不明显的，应建议间隔2-4 周后采集第3 份血液标本。（三）包涵体检测血涂片的制备。采集血液标本后，制作厚血片，进行红细胞裂解处理等。（四）媒介蜱标本的采集。采集动物体表媒介蜱，用镊子夹取，放入铺垫有潮湿滤纸或纱布的青霉素小瓶或试管中，用纱布包紧瓶口以防止蜱爬出。实验室接到蜱标本后，首先应进行种属鉴定，然后按类别分组（1-5 只蜱 /组）
3、，采用 75% 酒精浸泡30min 后，用无菌蒸馏水反复冲洗3 次。最后进行分组研磨，研磨液用于提取DNA ,进行PCR扩增。（五）有条件时，可采集活检或尸检标本，冰冻、福尔马林固定或石蜡包埋后进行实验室检测。具体方法参照病理实验室相关要求和卫生部传染病人或疑似传染病人尸体解剖查验规定的相关要求。三、标本采集和保存注意事项标本采集应符合无菌操作要求。抗凝血如不能立即床边接种，应置于4环境保存，避免冰冻（不超过2 周） 。非抗凝血应及时进行无菌分离血清，血清用于抗体检测，血球部分研磨后提取DNA 用于 PCR 检测。 如不能及时检测，可暂置于20 环境保存。所有标本应置入大小适合、带螺旋盖、内有
4、垫圈的冻存管内，拧紧管口标本采集后，应认真填写采样登记表。四、实验室检测（一）包涵体的检测。1. 血片及白细胞涂片制备采集的抗凝血标本尽快用血球层推血片，待干燥后冷丙酮固定 10min ；或提取抗凝血中的白细胞并进行涂片，待干燥后冷丙酮固定10min 。2. 染色通常采用瑞氏（Wright ）染色法、姬氏（Giemsa） 染色法及瑞姬混合染色法。有条件的实验室，可使用美国CDC推荐的染色方法。3. 染液配置方法（ 1 ）瑞姬染液：取瑞氏染料和姬氏染料各0.5 g ，以甲醇研溶，加甲醇500ml保存，每天摇匀1次，1周后可使用。（ 2） 改良 Mc Donald 法瑞姬染色剂：75 ml 甘油
5、（分析纯）中加入磷酸盐缓冲液（Na2HPO4 1g 和 KH2PO4 2g） ，以 4 ml 蒸馏水溶解，37 水浴 24 h 溶解混匀，用滤纸过滤，保存于密封的棕色瓶中备用。上述甘油缓冲液1.5 ml加瑞姬染色剂50 ml ，混匀后备用。4. 染色步骤血推片或白细胞涂片分别以两种染色剂染色2 min ，再加蒸馏水作用5 min ，用自来水冲洗。5. 结果观察中性粒细胞中可见桑葚状包涵体（见图 1 ） ， 并注意保存相关标本，以便进行复核。（二）血清学检测。常用血清学方法为间接免疫荧光（IFA）法。采集急性期（发热初期，一般发病1 周内）与恢复期（至少间隔2-3周）双份血清。如恢复期血清抗体检
6、测阴性，应建议医生采集第 3 份血液样本（间隔2-4 周） 。1. 试剂使用国际推荐的、经过ISO 质量认证的产品。2. 方法及操作按说明书进行。3. 结果解释IFA 检测结果解释按说明书进行。如果同时检测双份血清，IgG 抗体 4 倍升高，则结果强烈支持嗜吞噬细胞无形体感染。如果急性期抗体升高，而恢复期没有升高或轻微升高，则应采集第3 份血液样本（间隔2-4 周）进行进一步检测。（三）嗜粒细胞无形体核酸PCR 检测。目前，国际推荐使用16S rRNA 基因检测方法，有条件的实验室，可进一步选用热休克蛋白基因groEL 扩增方法。1. DNA提取用急性期、未使用抗生素的 EDTA抗凝血或非抗凝
7、血血 球部分、白细胞及蝉研磨液提取DNAo最后，以AE缓冲液50血抽滤以提高回收的 DNA浓度。如采用血液白细胞层提 取DNA ,可明显提高阳性检由率。 实验时，应采集当地正常 人血液同时提取 DNA,作为PCR的阴性对照。2. PCR扩增（1） 16S rRNA 基因检测：16S rRNA 高度保守，是 PCR检测最常用的扩增靶基因，巢式 PCR检测可提高检测 灵敏度和特异度，采用属特异及种特异引物同时进行检测。PCR检测应分区进行，避免污染。使用引物序列见表 1。表1巢式PCR佥测无形体及埃立克体16S rRNA基因常用引物引物名称序歹u片段长度（bp）Eh-out1(AF414399)5
8、 -TTG AGA GTT TGA TCC TGG CTC AGA ACG-3653Eh-out2(AF414399)5 -CAC CTC TAC ACT AGG AAT TCC GCT ATC-3,Eh-gs1(AF414399)5 -GTA ATA CT GTA TAA TCC CTG- 3282Eh-gs2(AF414399)5 -GTA CCG TCA TTA TCT TCC CTA-3 HGA15 -GTC GAA CGG A TT ATT CTT TAT AGC TTG-3389HGA25 -TAT AGG TAC CGT CAT TAT CTT CCC TAC-3，PCR反应混合
9、物的准备按常规进行。第一轮反应采用外引物对Eh-out1和Eh-out2 , DNA模板10 pl （白细胞提取的DNA可适当减少）。PCR反应体系总体积为 25以l或50 M （需 要进行PCR测序或克隆时，应适当扩大反应体系），其它成分的浓度按常规进行。反应程序如下：94 5min40 循环：94 c 45sec55 C 50sec72 c 1min72 C 总延伸5min第二轮反应使用2对引物分别进行巢式 PCR。2对引物 分别是无形体属及埃立克体属通用内引物（Eh-gs1、 Eh-gs2 ）;以及HGA种特异性引物（HGA1及HGA2 ）。检 测样本取第一轮产物1-2日为模板，阳性对照
10、取0.5日为模板。 反应程序同第一轮反应。（2）热休克蛋白基因groEL扩增与groEL基因的应用相比，16S rRNA基因的应用更为 广泛，但groEL基因在不同种属间具有较大的变异性。因此，对于诊断及菌株的鉴定，groEL基因均具有重要意义。该基 因扩增使用巢式PCR,引物序列见表2。表2 groEL基因扩增常用引物引物名 称序歹U退火温 度片段长度bp）HS15-TGG GCT GGT A (A/C) TGA AAT52 c1431HS65-CCI CCI GGI ACIA ( C/T) ACC TTCHS435-AT (A/T) GC (A/T) AA ( G/A ) GAA GCA
11、TAG TC55 cHGA480HS455-ACT TCA CG (C/T) (C/T) TCA TAG ACHME528DNA提取同上。PCR检测时，反应混合物的准备按常规进行。DNA 模板量同16S rRNA 基因检测。巢式PCR 第一轮反应采用外引物对HS1 及 HS6 。反应程序如下：3 循环：94 1min482min7090sec37 循环： 88 1min522min7090sec68总延伸 5min第二轮 PCR 引物采用HS43 及 HS45 。 检测样本取第一轮产物1-2出为模板，阳性对照取0.5回为模板。反应程序同第一轮反应。反应程序同第一轮反应，但退火温度由52改为 5
12、5。3测序及分析对扩增产物进行测序并进行同源比较，分析当地流行株与其它地区的变异性。(四)病原体分离培养。多用 HL-60 进行嗜吞噬细胞无形体的分离培养。最常用的分离方法是将白细胞部分接种培养基，然后将 100-500以 抗凝血接种到悬浮有 2X105或1 X106细胞内，每2-3天染色 检查包涵体，一般5-10 天可查见包涵体。由于分离可能受到红细胞的影响，因此，建议使用以下方法：1. 白细胞分离：采用密度梯度离心方法( Ficoll-Paque ) 。一般采用2-3 ml EDTA 抗凝血， 用 2 倍体积的无菌Hanks 平衡盐溶液稀释，最后采用Histopaque（ Sigma ，
13、St . louis, Mo ）密度梯度离心分离白细胞，可以获得较高的白细胞，用以分离 HGA。 采用白细胞分离方法进行接种时，应注意防止操作过程中的污染。2. 红细胞裂解后收集白细胞（NHCl 4裂解法） 。3. 在使用含有红细胞的标本培养后，另加入宿主未感染的细胞，建立混合培养。血液白细胞悬浮于2ml 体积、 含有 5-10% 胎牛血清的培养基中， 且在 25 cm 2 培养瓶内与培养细胞作用3 小时。 37、5% CO 2 条件下振摇孵育，可增加病原体与细胞的作用。病原体的鉴定：可通过种特异引物进行PCR 鉴定。五、生物安全在标本采集、运输及实验室工作过程中，生物安全应参照病原微生物实验
14、室生物安全管理条例中的有关要求进行。（一）实验室生物安全。标本灭活、病原DNA 标本提取及病原体分离操作应在生物安全n级实验室进行。非感染性材料的检测可在生物安全 I 级实验室进行。（二）血液标本采集安全注意事项。采集病例的标本时，应做好个人防护。采集者应戴乳胶手套，尽量避免病例的血液外溢或直接接触。如发生血液外溢污染环境时，应及时采用75% 酒精或常用消毒剂进行消毒处理。应按照对传染性样本的要求，对采集标本的器具及病人止血棉球及时进行消毒处理。防止锐器扎伤皮肤，一旦发生，应按临床外科要求，及时进行伤口清创。如直接沾染了临床诊断病例或确诊病例的血液，除及时消毒皮肤外，应口服强力霉素预防感染，服用剂量参照人粒细胞无形体病诊疗方案（试行） （附件 1 ） 。（三）采集动物宿主与媒介蜱标本个人防护。野外采集标本时，应穿着颜色明亮的防护服，并将衣袖或裤管口扎紧以防蜱叮咬人体，且容易发现蜱的附着。一旦发现有蜱附着体表，应用镊子夹取，不要用手直接摘除。野外作业或活动的人员可使用驱避剂或防蚊油喷涂皮肤，也可用硫化钾代替防蚊油。（四）标本运输安全注意事项。应参照病原微生物实验室生物安全管理条例中的有关要求（B 类）进行。（五）在诊疗及标本的采集、包装和实验室检测等过程中所产生的医疗废物，应按照医疗废物管理
