琼脂糖凝胶电泳鉴定DNA琼脂糖凝胶电泳琼脂糖凝胶电泳是用琼脂或琼脂糖作支持介质的一种电泳方法对于分子量较大 的样品，如大分子核酸、病毒等，一般可采用孔径较大的琼脂糖凝胶进行电泳分 离琼脂糖凝胶约可区分相差100bp的DNA片段,其分辨率虽比聚丙烯酰胺凝胶低, 但它制备容易，分离范围广，尤其适于分离大片段DNA普通琼脂糖凝胶分离 DNA的范围为0.2-20kb，利用脉冲电泳，可分离高达10A7bp的DNA片段 琼脂糖凝胶电泳操作流程准备干净的配胶板和电泳槽注意DNA酶污染的仪器可能会降解DNA，造成条带信号弱、模糊甚至缺失 的现象选择电泳方法一般的核酸检测只需要琼脂糖凝胶电泳就可以；如果需要分辨率高的电泳， 特别是只有几个bp的差别应该选择聚丙烯酰胺凝胶电泳；用普通电泳不合适的 巨大DNA链应该使用脉冲凝胶电泳注意巨大的DNA链用普通电泳可能跑不 出胶孔导致缺带正确选择凝胶浓度对于琼脂糖凝胶电泳，浓度通常在0.5〜2%之间，低浓度的用来进行大片 段核酸的电泳，高浓度的用来进行小片段分析低浓度胶易碎，小心操作和使用 质量好的琼脂糖是解决办法注意高浓度的胶可能使分子大小相近的DNA带不 易分辨，造成条带缺失现象。
适合的电泳缓冲液常用的缓冲液有TAE和TBE，而TBE比TAE有着更好的缓冲能力电泳 时使用新制的缓冲液可以明显提高电泳效果注意电泳缓冲液多次使用后，离子 强度降低，PH值上升，缓冲性能下降，可能使DNA电泳产生条带模糊和不规 则的DNA带迁移的现象电泳的合适电压和温度电泳时电压不应该超过20V/cm,电泳温度应该低于30°C,对于巨大的DNA 电泳，温度应该低于15C注意如果电泳时电压和温度过高，可能导致出现条 带模糊和不规则的DNA带迁移的现象特别是电压太大可能导致小片段跑出胶 而出现缺带现象DNA样品的纯度和状态是电压太大可能导致小片段跑出胶而出现缺带现象DNA样品的纯度和状态 注意样品中含盐量太高和含杂质蛋白均可以产生条带模糊和条带缺失的现象乙 醇沉淀可以去除多余的盐，用酚可以去除蛋白注意变性的DNA样品可能导致 条带模糊和缺失，也可能出现不规则的DNA条带迁移在上样前不要对DNA 样品加热，用20mM NaCl缓冲液稀释可以防止DNA变性DNA的上样正确的DNA上样量是条带清晰的保证注意太多的DNA上样量可能导致 DNA带型模糊，而太小的DNA上样量则导致带信号弱甚至缺失TIANGEN公 司DNA分子量标准每次上样6ul即可得到清晰均匀的条带。
Marker的选择DNA电泳一定要使用DNA Marker或已知大小的正对照DNA来估计DNA 片段大小Marker应该选择在目标片段大小附近ladder较密的，这样对目标片 段大小的估计才比较准确.TIANGEN公司的DNA Marker条带清晰，亮度均匀， 质量稳定，是您实验的首选需要注意的是Marker的电泳同样也要符合DNA 电泳的操作标准如果选择入DNA/HindHI或者入DNA/EcoRI的酶切Marker，需 要预先65°C加热5min,冰上冷却后使用从而避免HindHI或EcoRI酶切造成 的粘性接头导致的片段连接不规则或条带信号弱等现象凝胶的染色和观察实验室常用的核酸染色剂是溴化乙啶（EB），染色效果好，操作方便，但 是稳定性差，具有毒性而其他系列例如SYBR Green, GelRed，虽然毒性小， 但价格昂贵oTIANGEN公司的Gen eGreen相比则是性价比高的低毒替代染料， 其灵敏度比传统EB染料高10倍以上注意观察凝胶时应根据染料不同使用合 适的光源和激发波长，如果激发波长不对，条带则不易观察，出现条带模糊的现 象实例实验:一、实验原理用于DNA分离，纯化和鉴定的凝胶电泳有二类，一类是琼脂糖凝胶电泳，适用于1kb和大 于1kb以上DNA；另一类是聚丙烯酰胺凝胶电泳，适用小于1kb的DNAo琼脂糖凝胶电泳 是一种非常简便，快速分离、纯化和鉴定DNA的方法，已广泛应用于核酸研究中°DNA在 琼脂糖凝胶中迁移率和凝胶浓度、DNA分子大小、DNA分子的构象及电泳电压密切相关。
染色采用溴化乙锭（EB），EB在紫外钱照射下的发射荧光EB能插入DNA分子中形成 荧光结合物，使发射的荧光增强几十倍荧光的强度正比于DNA的含量，如将已知浓度的 标准样品作电泳对照，就可估计出待测样品的浓度二、试剂：1. 电泳缓冲液：40mmol/L Tris-HCI（pH8.0）20mmol/L NaAC2mmol/L EDTA配制方法：先配50倍电泳缓冲液，用时取5ml，重蒸水稀释至250ml 50倍电泳缓冲配制方法：Tris121.1 g无水NaAC41.0 gEDTA・Na218.6 G先用400ml重蒸水加热搅拌溶解后，再用冰乙酸调节pH至8.0 （大约25毫升）然后加蒸 水定容至500ml1.1kg/cm2灭菌20分钟2. 溴酚蓝指示剂：称取溴酚蓝200mg，加重蒸水10ml，在室温下过夜，待溶解后再称取蔗糖50g,加蒸馏水 溶解后移入溴酚蓝溶液中，摇匀后加重蒸水定容至100ml，加10mol/L NaOH 1〜2滴，调 至蓝色—1~\ liTL 1 \ o3. EB：（10 mg/ml 溴化乙锭）配制方法：溴化乙锭1 gddH2O100 ml4.琼脂糖三、 仪器1 •微波炉2. 电泳仪3•手提式紫外检测仪4.电泳槽四、 实验方法1 •制备琼脂糖凝胶：称取琼脂糖0.105g，溶解在15ml电泳缓冲液中，置微波炉中至琼脂 糖溶化均匀。
2. 灌胶：将电泳槽载胶板两侧用透明胶布或医用胶布密封好，防止灌胶时出现渗漏然后 在凝胶溶液中加EB 3pl，摇匀插好点样梳子，轻轻倒入电泳槽载胶板中除掉气泡3. 待凝胶冷却凝固后，轻轻取出点样流，将电泳槽载胶板两侧封胶用的透明胶布或医用胶 布撕下4. 点样：提取的质粒DNA样品液8pl+1.6pl溴酚蓝指示剂，混匀、点样记录点样次序及点样量5. 在电泳槽中加入电泳缓冲液，将点好样的载胶板轻轻放在电泳槽内6. 电泳：接上电极线，点样侧接电泳仪负极，蝇一侧接电泳仪正极，50V电泳45至60分 钟7. 将电泳槽载胶板拿到暗室，在紫外灯下直接观察结果五、 说明1. DNA在琼脂糖凝胶中的电泳迁移率与凝胶浓度、DNA分子大小、DNA分子构象及电泳 电压有关1）凝胶浓度 根据待分离DNA分子的大小，选择凝胶中琼脂糖的含量（凝胶浓度）琼脂糖的含量（％）分离线状DNA分子的有效范围（kb）0.360－50.620－10.710－0.80.97－0.51.26－0.11.54－0.22.03－0.1（2） DNA分子大小 线状双链DNA分子在一定浓度凝胶上电泳的迁移率与线性双链DNA 分子的分子量对数成反比。
3） DNA分子的构象线状双链DNA分子在一定浓度琼脂糖凝胶中有泳动距离与DNA的 分子量对数成反比但当DNA分子处于不同构象时，它在电场中移动的距离不仅和分子量 有关，还和它本身构象有关有相同分子量的线状、开环状（超螺旋为0）和超螺旋DNA 在琼脂糖凝胶中移动速度是不一样的高度超螺旋的DNA移动速度最快，随着超螺旋程度 降低，相应DNA的移动速度依次变慢，最慢者为线状双链DNA例如SV40病毒DNA处 于高度超螺旋状态，电泳速度最快，经拓扑异构酶作用产生不同程度的超螺旋DNA在凝胶 电泳时，按不同速度在胶上移动而形成多条带了解这一点对分析DNA电泳图谱至关重要 当用琼脂糖凝胶电泳鉴定质粒纯度时，发现凝胶上有数条DNA带，难以确认是由于质粒本 身存在着超螺旋引起的，还是因为含有其他DNA引起的可采用下述方法鉴定从琼脂糖凝 胶上将DNA带逐个回收，用同一种限制性内切酶切，然后在琼脂糖凝胶上电泳，如果在凝 胶上出现相同的DNA图谱，则说明它们是处于不同超螺旋状态的同一种DNA4） 电源电压低压条件下，线状DNA在琼脂糖凝胶上泳动速度和电压成正比随着电压 升高，高分子量的DNA片段泳动速度和电压不成正比关系，分辨率下降了，因此为了得到 良好的分离效果，电场电压不要超过5V/CM。
2. DNA琼脂糖凝胶电泳图谱分析离不开紫外分析灯,可是紫外光对DNA分子有切割作用 从胶上回收DNA供重组同时，避免紫外光切割是非常重要的，尽量缩短光照时间并采用长 波长紫外灯（300〜360nm）可减少紫外光切割DNA3. 溴化乙锭（EB）染色：溴化乙锭是核酸的染色剂，在水平式琼脂凝胶电泳中，EB对DNA 的染色，一般有三种做法1） 在制胶中与电泳缓冲液中同时加入0.5pg/ml的FB2） 只在胶中加入0.5pg/ml的EB,而在电泳缓冲液中不加EB，这就减少了操作时双手 受EB污染的机会，而且DNA区带也清晰可见这是目前绝大多数实验使用的方法3） 在电泳结束以后，取出琼脂糖产凝胶，放在含有0.5pg/ml EB的电泳缓冲液（或ddH2O） 中染色40分钟如果天气寒冷，琼脂糖浓度高凝胶板厚也可在37°C保温染色或轻微振荡染 色也可采用加大EB的剂量（1p/ml）或延长染色时间比较3种使用EB方法，采用（1）与（2）可与实验过程中随时DNA的迁移情况，极为方 便但是（1）的操作更需小心，防止实验用具及台面的EB污染所以一般选用（2）3） 的好处是电泳过程中DNA保持本来的状态，有利于凝胶图谱分析，更能准确地测定DNA 分子量。
因为在凝胶中有EB时，一定量EB插入DNA就会使双链线状DNA的迁移速度下 降EB是强致癌剂，因此使用过程上要注意戴手套，及时用高锰酸钾处理污染物具体的方法 如下1） 加入足量的水使溴化乙锭的浓度降低至0.5mg/ml以下2） 加入1倍体积的0.5mol/L KmnO4,小心混匀后再加1倍体积的2.5mol/L HCI小心 混匀，于室温放置数小时3） 加入1倍体积的2.5moI/L NaOH，小心混匀后可丢弃该溶液 以前曾广泛采用的用次氯酸处理溴化乙锭稀溶液的方法，效果不好 此外，溴化乙锭在262 r分解在标准条件下焚化后也不再具有危害性4. 溴酚蓝指示剂：常用的电泳上样缓冲液含溴酚蓝，有的还含有二甲苯青，这些指示剂可 以指示电泳的速度，也可以利用其迁移率大致估计DNA的分子量溴酚蓝在琼脂糖凝胶中 移动的速率约为二甲苯青FF的2.2倍,而与琼脂糖浓度无关，以0.5xTBE作电泳缓冲液时， 溴酚蓝在琼脂糖中的泳动速率约与长300bp的双链线状DNA相同，而二甲苯青FF的泳动 则与4kb的双链线状DNA相同在琼脂糖浓度为0.5〜1.1%的范围内，这些对应关系受凝 胶浓度变化的影响并不显著，但在聚丙烯酰胺凝胶中其对应关系受凝胶浓度影响较大（详见 附录表三）。
此外蔗糖使样品密度增大，使样品在点样时沉于点样孔底部，不扩散上样缓 冲液一般配成6倍的，加样时，加入点样量的1/6即可《分子克隆实验指南（第三版）》419 页 当当网可以买到，最好依照书上的配方，因为我可 能打错了丙烯酰胺浓度有效分离范围/bp二甲苯氰FF 溴酚蓝3.51000~20004601005.080~500260658.060~4001604512.040~200702015.025~150601520.06~1004512（N,N'-亚甲双丙烯酰胺的浓度为丙烯酰胺的1/30）（染料一行列出的数字意思是：染料在此浓度。