第二章 细胞生物学研究技术,,生命科学是,实验科学,，它的很多成果都是通过实验才得以发现和发展的许多细胞生物学的重要进展以及新概念的形成，往往来自新技术的应用因此，方法上的突破，对于理论和应用上的发展具有巨大的推动作用第一节,显微镜技术,,第二节,细胞成分分析技术,,第三节,细胞组分分离技术,,第四节 细胞分选技术,,第五节 细胞工程技术,,第六节 分子生物学技术,学习内容,一、光学显微镜技术,,,(,light microscopy),第一节 显微镜技术,二、电子显微镜技术,,,(,electron microscopy),观察细胞及其组分的,形态和结构,显微镜成像三要素,:,①,照明系统，,②,被观察的样品，,③,聚焦和成像的透镜系统,一、显微镜成像基本原理,,在光学显微镜中，照明系统是可见光，使用的是玻璃透镜系统，可直接通过目镜观察镜像在电子显微镜中，照明系统为电子束，使用电磁透镜，通过荧光屏观察样品的镜像0.61 λ,分辨率,D,N,. sin α / 2,=,λ:,,光源波长,;,α:,物镜镜口角,;,N:,介质折射率,显微镜的分辨能力,肉眼：,0.2 mm;,光镜：,0.2 um;,电镜：,0.2 nm,二、常用光学显微镜,普通光学显微镜,,倒置显微镜,(inverted microscope),,,荧光显微镜,(fluorescence microscope),,,相差显微镜,(phase-contrast microscope),,,微分干涉相差显微镜,(differential interference contrast microscope, DIC),,,暗视野显微镜,(dark field microscope),,,激光共焦扫描显微镜,(laser confocal microscope),,倒置显微镜,,组成和普通显微镜一样，只不过物镜与照明系统颠倒，用于观察,培养的活细胞,，具有相差物镜。
相差显微镜,,在结构上进行了特别设计，尤其是光学系统，将光程差或相位差转换成振幅差，主要用于观察,体外培养中活细胞的形态结构,利用,紫外线发生装置,(,如弧光灯、水银灯等,),发出强烈的紫外线光源,，,用于观察细胞中有,自发荧光、诱发荧光,或经,荧光染料,标记,的结构,荧光显微镜,,特点是：,a,光源为紫外光，波长较短，分辨力高于普通显微镜；,b,有两个特殊的滤光片，光源前的用以滤除可见光，目镜和物镜之间的用于滤除紫外线，用以保护人目微分干涉显微镜,,偏振光经合成后，使样品中厚度上的微小区别转化成明暗区别，增加了样品反差且具有立体感适于研究,活细胞中较大的细胞器,暗视野显微镜,,暗视野显微镜,(dark field microscope),的聚光镜中央有当光片，使照明光线不直接进人物镜，只允许被标本反射和衍射的光线进入物镜，因而视野的背景是黑的，物体的边缘是亮的利用这种显微镜能见到小至,4~200 nm,的微粒子，分辨率可比普通显微镜高,50,倍暗视野显微镜主要观察的是,物体的轮廓,，,不分辨内部的微细构造,，适合于观察活细胞内的细胞核、线粒体、液体介质中的细菌和霉菌等可对细胞内部非侵入式光学断层扫描成像，可进行一系列,亚细胞水平的结构,和功能研究 。
激光共聚焦扫描显微镜,扫描电子显微镜,,,Scanning electron microscopy,，,SEM,透射电子显微镜,,,Transmission electron microscopy,，,TEM,三、电子显微镜,,电子显微镜观察到的,结构称,超,(,亚,),微结构,，可放大几万倍至几十万倍扫描隧道显微镜,,,Scanning tunneling microscope,，,STM,观察细胞,内部超微结构,，分辨率,0.2 nm,用电子束穿透标本，经电磁场的会聚和放大后在荧光屏上显像或将影像投射到照相底片由于电子束穿透力弱，故经固定后的电镜标本需制成超薄切片,(50,～,80 nm),，并用重金属盐如柠檬酸铅和醋酸铀等染色标本制备：,①,固定,(,戊二醛等,),②,包埋,(,环氧树脂,),③,切片,(50-80nm),④,染色,(,醋酸铀和柠檬酸铅等重金属盐,),透射电镜术,扫描电镜术,,用于观察,细胞表面的立体细微结构,需将小块组织经固定、脱水、干燥后，在其表面喷镀薄层碳膜或金属膜图像清晰，富有立体感 仪器设备使用注意事项,,使用前必须,认真阅读,“,说明书,”,，了解其工作原理和性能，按照,“,说明书,”,的要求进行操作，或在技术人员的,指导下,操作。
第二节 细胞组分的分析方法,,,一、,细胞化学技术,,二、,免疫细胞化学技术,,三、,核酸杂交技术,,四、,放射自显影技术,,一、细胞化学技术,,主要用于显示细胞内核酸、蛋白质、酶、糖与脂类等利用一些,显色剂,与所检测物质中一些特殊基团特异性结合的特征，通过显色剂在细胞中的定位及颜色的深浅来判断某种物质在细胞中的分布和含量如用过碘酸,—Schiff,反应检测多糖，用脂溶性染料显示脂类，用酶化学染色显示某种酶，用孚尔根反应显示,DNA,二、免疫细胞化学技术,是应用免疫学原理，采用,标记,的抗原或抗体，通过,抗原与抗体的特异性结合,，然后用显微镜观察标记物，显示细胞内的抗体或抗原,(,肽或蛋白质等,),的分布部位及相对含量常用的标记物有辣根过氧化物酶、荧光素等，因此又可分为,免疫酶技术,、,免疫荧光技术,等二种基本染色法,,直接法：第一抗体被标记间接法,：第一抗体也被看作抗原，而第二抗体被标记 由于信号被放大，故灵敏度更高是用,标记,的,RNA,或,DNA,探针,检测,RNA,或,DNA,片段的有无、及在转录水平检测基因的活性,(mRNA),的一种重要方法三、核酸分子杂交技术,,原理：具有互补核苷酸序列的两条单链核苷酸分子片段，在适当条件下，通过氢键结合，形成,DNA-DNA,，,DNA-RNA,或,RNA-RNA,杂交的双链分子。
用核酸杂交技术检测细胞内某一基因在染色体上的定位，称,染色体原位杂交,用核酸杂交技术检测某一基因或转录物,mRNA,在细胞内的定位和转录状况，称,细胞原位杂交,原位杂交技术,Southern,,杂交,,是,体外,分析,特异,DNA,序列,的方法操作时先用限制性内切酶将核,DNA,或线粒体,DNA,切成,DNA,片段，经凝胶电泳分离后，转移到醋酸纤维薄膜上，再用标记的探针杂交，即可辨认出与探针互补的特殊核苷序列四、放射自显影术,,放射自显影术,(radioautography,autoradiography),用于研究,标记化合物在机体、组织和细胞中的分布、定位、变化、作用机理、作用部位,等等其原理是将,放射性同位素标记物,导入生物体内，经过一段时间后，进行制片、放射性曝光、显影、定影等处理，即得知标本中标记物的准确位置和数量放射自显影的切片还可再用染料染色，这样便可在显微镜下对标记上放射性的化合物进行定位或相对定量测定第三节,细胞成分的分离技术,,分离技术是一大类技术的总称，包括,细胞亚结构,的分离和,生物大分子,的分离一、离心分离技术,(centrifugation),,二、层析分离技术,(chromatography),,一、 离心分离技术,,离心分离细胞组分和生物分子是最常用的分离方法，因为不同的细胞器和生物分子有,不同的体积和密度,，可在不同离心力的作用下沉降分离。
常用的两类离心分离方法：,,差速离心,(differential centrifugation),,密度梯度离心,(,density gradient centrifugation,),细胞器及大分子的密度及其沉降系数,不同的细胞结构分离所需的离心力,结 构,离心力,细胞核,800 - 1000,g,线粒体,20,，,000 - 30,，,000 g,叶绿体,20,，,000 - 30,，,000 g,溶酶体,20,，,000 - 30,，,000 g,微体,20,，,000 - 30,，,000 g,粗面内质网,50,，,000 - 80,，,000 g,质膜和滑面内质网,80,，,000 - 100,，,000 g,游离核糖体、病毒粒子,150,，,000 - 300,，,000 g,差速离心,,在,密度均一,的介质中,由低速到高速,逐级离心，用于分离不同大小的细胞器在差速离心中细胞器沉降的顺序依次为：核、线粒体、溶酶体与过氧化物酶体、内质网与高基体、最后为核蛋白体由于各种细胞器在大小和密度上,相互重叠,，差速离心只用于分离,大小悬殊,的细胞，更多用于分离细胞器。
通过差速离心可将细胞器初步分离，常需再通过密度梯度离心进一步分离纯化密度梯度离心,,用一定的介质在离心管内形成一个,连续,或,不连续,的密度梯度，将细胞匀浆置于介质的顶部，通过重力或离心力场的作用使细胞,器,分层、分离 又可分为,速度沉降,和,等密度沉降,两种速度沉降,(velocity sedimentation),主要用于,分离密度相近而大小不等,的细胞器这种沉降方法所采用的介质密度较低，介质的最大密度应,小于,被分离生物颗粒的最小密度生物颗粒,(,细胞器,),在十分平缓的密度梯度介质中按各自的沉降系数以不同的速度沉降而达到分离速度沉降,,等密度沉降,(isopycnic sedimentation),适用于分离密度不等的颗粒细胞器在,连续梯度,的介质中经足够大离心力和是够长时间则沉降或漂浮到,与自身密度相等,的介质处，并停留在那里达到平衡，从而将不同密度的细胞器分离等密度沉降,二、层析分离技术,,层析,是广泛使用的,分离蛋白质,的方法，它是根据蛋白质的形态、大小和电荷的不同而设计的物理分离方法①,凝胶过滤层析,(gel filtration chromatography),,②,离子交换层析,(ion-exchange chromatography),,③,亲和层析,(affinity chromatography),,凝胶过滤层析,,又称,排阻层析,或,分子筛过滤,，主要是根据蛋白质的,大小和形状,，即蛋白质的质量进行分离和纯化的一种方法。
原理：蛋白质的体积大小不一，凝胶上有大小不一的孔；大的蛋白质在凝胶中不进入孔内直接下来，速度最快，中等大小的进入大孔中，下来速度较慢，小的蛋白质则进入小孔中，下来速度最慢离子交换层析,,离子交换层析,是根据,蛋白质所带电荷的差异,进行分离纯化的一种方法它以离子交换剂为固定相，依据流动相中的组分离子与交换剂上的平衡离子进行可逆交换时的,结合力大小的差别,而进行分离的一种层析方法在生物分子中，有些分子的特定结构部位能够同其他分子,相互识别并结合,，,如酶与底物的识别结合、受体与配体的识别结合、抗体与抗原的识别结合，,这种结合既是,特异的,，又是,可逆的,，改变条件可使这种结合解除，生物分子间的这种结合能力称为亲和力亲和层析就是根据这样的原理设计的蛋白质分离纯化方法,亲和层析,一、,离心分选术,,二、流式细胞分选术,,三、免疫磁珠分选术,,四、电泳分选术,第四节,细胞分选技术,,流式细胞术,是对单个细胞进行快速定量分析与分选的一门技术在分析或分选过程中，包在鞘液中的细胞通过高频振荡控制的喷嘴，形成包含单个细胞的液滴，在激光束的照射下，这些细胞发出散射光和荧光，经探测器检测，转换为电信号，送入计算机处理，输出统计结果，并可根据这些性质分选出高纯度的细胞亚群，分离纯度可达,99%,。
包被细胞的液流称为,鞘液,，所用仪器称为,流式细胞计,(,仪,),(,flow cytometer,),二、流式细胞术,三、免疫磁珠法,,磁珠可以结合蛋白质，也可以被磁铁吸引而发生力学移动将微小磁珠用,抗体,(,或抗原,),包被,后，使之与溶液中目的细胞表面的抗原,(,或抗体,),特异性结合,，再通过磁力作用发生力学移动，从而达到目的细胞与其他细胞,(,或物质,),分离四、细胞电泳,,在一定,pH,值下细胞表面带有净的,正或负电荷,，能在外加电场的作用下发生泳动，这种现象称为细胞电泳,(cell electrophoresis),各种细胞或处于不同生理状态的同种细胞电荷量有所不同，故在一定的电场中的泳动速度不同，可用来分离不同种类的细胞所谓细胞工程，就是应用细胞生物学和分子生物学的方法，对细胞进行操作第五节,细胞工程技术,,细胞工程基本技术,主要包括：细胞体外培养、细胞融合、细胞器移植及基因转移等一、细胞体外培养技术,,二、细胞融合及单抗技术,,三、,显微操作技术,,四、干细胞技术,,将,离体细胞或组织,放置在适当的环境条件下进行培养，使其能生长并增殖的一种技术用于检测各种理化因子、细胞因子等对细胞形态结构、增殖、分化、代谢、运动、吞噬、分泌等生命活动的影响，还可用于研究细胞癌变及逆转的机制，也可用于获取特定的细胞、细胞产物等等。
一、细胞培养技术,二、细胞融合技术,,通过培养和诱导，两个或多个细胞合并成一个双核或多核细胞的过程称为,细胞融合,(cell fusion),或,细胞杂交,相同基因型细胞融合成,同核体,(homokaryon),；不同基因型的杂交细胞则称为,异核体,(heterokaryon),动物细胞融合有以下三条途径：,,,1.,病毒诱导融合；,,,2.,化学诱导融合；,,,3.,电激诱导融合单克隆抗体技术,,单克隆抗体,(,monoclone antibody,),技术是细胞杂交技术的成功应用正常淋巴细胞,(,如小鼠脾细胞,),具有分泌抗体的能力，但不能在体外长期培养，瘤细胞,(,如骨髓瘤,),可以在体外长期培养，但不分泌抗体1975,英国人,Kohler,和,Milstein,将两种细胞杂交而创立了,单克隆抗体技术,，获,1984,年诺贝尔奖单克隆抗体制备流程,用特异抗原免疫,小鼠,(BALB/c),,,取脾脏浆细胞 鼠骨髓瘤细胞,,细胞融合,,筛选杂交瘤细胞,,生产单克隆抗体,三、显微操作技术,在显微镜下，用,显微操作仪,对细胞进行解剖手术和微量注射的技术属显微操作技术 包括细胞核移植、嵌合体制作、细胞器移植、基因或染色体注入、胚胎切割、体外胚胎生产等。
1,核移植,(,克隆动物,),技术,,细胞核移植技术，就是将供体细胞核移入除去核的卵母细胞中，使后者不经过受精等有性过程,(,无性繁殖,),即可被激活，构成新的重组胚胎，重组胚胎移植后，发育成与供体细胞基因型相同的后代，使得核供体的基因得到完全复制嵌合体,(chimeras),是指由不同基因型细胞构成的生物体嵌合动物,是指由两种或两种以上具有不同遗传性质的细胞系组成的聚合胚发育成的动物个体嵌合动物技术是指由两个或两个以上同种或异种的受精卵组合发育而来的一个复合个体的制作技术制作嵌合动物的方法主要有,聚合法,和,囊胚注射法,2,嵌合动物技术,,聚合法,是将,2,个或多个去除透明带的早期胚胎，简单地聚合在一起培养形成一个嵌合胚胎的过程囊胚,注射法,是把细胞注射入囊胚腔中，囊胚经培养进一步发育形成一个嵌合胚胎的过程 注射的细胞可以是卵裂球、内细胞团细胞、,ES,细胞和,EG,细胞，甚至是已分化的细胞3,染色体操作技术,,按照人们的意图，有计划地削减、添加和替换染色体或其某一部分的方法和技术，以改变生物的遗传基础，达到人类需要的目的四、干细胞技术,,干细胞,是一类能自我更新和分化为特殊种类细胞的细胞。
干细胞被,《SCIENCE》1999,，,2000,及,2003,年评为“十大科技进展之一”干细胞技术主要包括：建立干细胞系，体外诱导分化，遗传改造，移植、体外构建组织和器官等干细胞分类,胚胎性干细胞：胚胎干细胞,ESs,、胚胎生殖细胞,EGs,组织特异性干细胞：造血干细胞、肝干细胞、,,皮肤干细胞、,全能干细胞：受精卵、卵裂球,专能干细胞：造血干细胞,,,精原干细胞,,,皮肤干细胞,多能干细胞：,ESs,、,EGs,；骨髓基质干细胞,按来源划分,按分化潜能划分,,,第五节 分子生物学技术,一、,PCR,技术,,二、基因工程技术,,三、转基因动物技术,一、,PCR,技术,,聚合酶链式反应,(polymerase chain reaction, PCR),用于在体外将微量的目标,DNA,进行大量扩增，以便进一步分析或操作反应体系：①样品,DNA,；②引物,(primer),；③,4,种,dNTP,；④,Tag,,DNA,聚合酶；⑤适宜的缓冲体系和适量的,Mg,2+,反应过程：①变性；②复性；③延伸；④循环,(,重复上述“变性,——,复性,——,延伸” 过程,),温度（℃）,时间（,min,）,94,,,72,,60,,,,94℃,变性（,1min,）,60 ℃,退火（,1min,）,72 ℃,延伸（,1.5min,）,循环,1,循环,2,循环,3,PCR,反应的每一个温度循环周期都是由,DNA,变性、引物退火和反应延伸三个步骤完成的。
图中设定的反应参数是,94℃,变性,1min,，,60 ℃,退火,1min,，,72 ℃,延伸,1.5min,如此周而复始，重复进行，直至扩增产物的数量满足实验需求为止PCR,反应的温度循环周期,PCR,的,反应体系,二、基因工程技术,,在分子水平上，用人工方法提取或合成不同生物的遗传物质，在体外切割、拼接和重组，然后通过载体把重组的,DNA,分子引入受体细胞，使外源,DNA,在受体细胞中进行复制与表达基因工程技术包括：,,1,分子水平上,的基因体外重组,(,即利用工具酶对,DNA,,,分子进行“外科手术”,),,2,细胞水平上,的基因表达无性繁殖的转化子筛选,载体的选择,目的基因的制备,体外重组,DNA,引入受体细胞,重组,DNA,的检测,基因体外重组,,转基因动物技术是指借助基因工程技术将体外重组的结构基因导入受精卵或早期胚胎，培育出转基因动物的技术三、转基因动物技术,一、受精卵雄原核显微注射法,,二、胚胎干细胞,(ES,细胞,),法,,三、逆转录病毒感染法,,四、体细胞核移植法,,五、精子载体法,,六、,YAC,法,转基因动物制作,方法,转基因动物制作,步骤,一、制备外源目的基因,,二、制备转基因胚胎,,三、转基因胚胎的筛选及培养，胚胎移植,,四、转基因胚胎的发育及鉴定,,五、筛选并建立转基因动物系,乳腺生物反应器技术,,乳腺生物反应器,是根据细胞中蛋白质合成与分选的机理，结合基因工程技术、动物转基因技术等，利用动物的乳腺分泌某些具有重要价值的基因产物。