临床医学论文-荧光金逆行标记大鼠视网膜神经节细胞【摘要】 目的 将荧光金（flurogold，FG）注射于 SD 大鼠上丘，观察到被FG 逆行标记的视网膜神经节细胞(retinal ganglion cells，RGC)，以及 SD 大鼠 RGC 的数目及分布方法 用 3%FG 双上丘注射，逆行标记 RGC5 天后做视网膜定向铺片，在荧光显微镜下距离视乳头中心上下左右各 2mm 拍摄照片利用计算机图像分析系统做 RGC 计数结果 右眼 RGC 单位面积数量472.9±54.13，左眼 RGC 单位面积数量 471.5±52.54双眼 RGC 单位面积数量相比差异无显着性（ P>0.05）视网膜血管自视盘发出呈放射状，血管走行区无标记细胞距视盘 2mm 始 RGC 分布较致密，视网膜周边部细胞分布较为稀疏结论 用荧光金逆行标记上丘方法来标记 RGC，是实验条件下研究 RGC 数量动态变化的可靠、有效方法关键词】 视网膜神经节细胞；荧光金【Abstract】 Objective Retinal ganglion cells (RGC) were retrograde labeled by injection of 3% fluorogold into both side of superior colliculus to observe the numbers and distribution of RGC .Four photographs were taken from every quadrant of the retina 2mm from the center of optic disc. Retinal ganglion cells were quantitatively analyzed by computer.Methods To identify RGC，we applied the 3%fluorogold to the superior colliculi.The retinal were examined through a fluorescence microscope after 5 days，four photographs were taken from every quadrant of the retina 2mm from the center of optic disc. Retinal ganglion cells were quantitatively analyzed by computer.Results The numbers of RGC were not significantly different between two groups. The numbers of right eye was 472.9±54.13.The numbers of left eye was 471.5±52.54.Conclusion The method that retinal ganglion cells (RGC) retrograde labeled by injection of fluorogold is reliable and effective.【Key words】 retinal ganglion cells；fluorogold视网膜神经节细胞（retinal ganglion cells，RGC）的慢性进行性丢失是青光眼最主要的病理生理学特征。
高眼压、缺血等原发性损伤首先引起一部分RGC 的丢失，丢失的节细胞产生出许多毒性物质，使其周围 RGC 的生存环境恶化，细胞膜离子通透性增加，线粒体膜遭受损害，致使细胞进入凋亡程序，导致细胞丢失［1］因此准确的 RGC 计数是研究青光眼发病机制及视神经保护治疗的关键指标该实验将荧光金（flurogold，FG）注射于 SD 大鼠上丘，观察到被 FG 逆行标记的 RGC，以及 SD 大鼠 RGC 的数目及分布1 材料与方法1.1 试剂与器械 荧光金（荧光金公司，美国），脑立体定位仪 900 型（David Kopf 仪器公司，美国），荧光显微镜（AH-2，奥林巴斯公司，日本），联想 Mustek 扫描仪1.2 实验动物 Sprague-Dawley 大鼠 10 只，购自北京维通利华实验动物技术有限公司雄性，重量 200~240g，裂隙灯检查大鼠前节，包括角膜、前房、虹膜和晶状体无异常改变Mydrine 散瞳，检眼镜观察眼底，包括视盘、眼底血管及部分视网膜无异常改变者实验动物在 12h 光照/12h 黑暗的条件下饲养 1.3 逆行标记 采用双上丘注射法逆行标记 RGC大鼠腹腔注射盐酸氯胺酮与地西泮注射液的等量混合液 3ml/kg 进行麻醉，将其固定在脑立体定位仪上，0.5%碘伏消毒皮肤，于正中切开皮肤向下分离达颅骨。
牙科钻钻开颅骨相应部位，用微量注射器吸取 3%FG（溶于 0.9%生理盐水中），每侧上丘注射两点（前囟后 5.9 和 6.4mm，旁开 1.4mm，深 4.0mm），每点注射 1.5μl，留针 5min1.4 视网膜定向铺片 实验第 5 天，实验动物在深麻醉下，于上方 12 点处做球结膜缝线标记，立即取出眼球固定于 4%多聚甲醛磷酸缓冲液中 2h沿角膜缘后 0.5mm 剪开眼球，去除角膜和晶状体，分离视网膜并将其定向平铺，空气中自然干燥，市售无色指甲油封片1.5 荧光照片 RGC 计数 在荧光显微镜下使用 V 波段荧光激发，距视盘中心 2mm 上下左右各拍摄照片 1 张，照片放大倍数 125×，分别代表上、下、左、右四个象限的 RGC 数量1.6 图像分析 使用联想 Mustek 扫描仪将照片以 100dpi 扫入计算机，使用彩色颗粒分析软件（CPAS）进行节细胞计数，将上、下、左、右 4 张照片节细胞数量累加，代表该眼节细胞单位面积数量1.7 统计学方法 使用 SPSS for Windows 10.0 统计软件包，采用配对 t检验，P0.05）视网膜血管自视盘发出呈放射状，血管走行区无标记细胞。
距视盘 2mm 始 RGC 分布较致密，视网膜周边部细胞分布较为稀疏（见图 2）但细胞内荧光仍较明显 表 1 双眼 RGC 单位面积数量注：t=0.288， P=0.783 讨论利用轴浆流逆向输送的特点，在颅内 RGC 投射的核团上丘、外侧膝状体［2］、视神经断端近眼球一侧放置辣根过氧化物酶或 Diamidido Yellow，FG(Fluorogold)，Evan Blue，Fluoro-Ruby(FR)［ 2～5］等各种荧光物质，通过逆向轴浆流将这些物质带到 RGC 胞体内，产生特定的染色效果，标记出 RGC，而 RGC 层中的其它细胞则不能着色而 HRP 参与细胞代谢，不能在细胞内长期存留某些示踪剂如快蓝、核黄等，易于从标记细胞内扩散到周围组织，且照射时褪色较快，即使保存在低温、避光条件下，仍不能长期保存另外应用传统的组织化学技术无法将 RGC 与视网膜内其它神经元严格区分，尤其是与移位的无长突细胞鉴别利用轴浆流逆向输送的特点，目前多用荧光金逆行标记上丘方法来标记 RGC，是实验条件下研究 RGC 数量动态变化的可靠、有效方法荧光金在紫外线照射下，其激发光波长 323nm，发射光波长为 408nm，标记的 RGC 呈金黄色强荧光，能标记细胞质，而细胞核不着色，能很好显示树突分支，细胞外无荧光染料渗漏，不易扩散，与周围组织分界清晰，除 RGC 层外，其余各层中均无荧光标记的细胞。
Selles-Navarro I［6］等研究发现应用荧光金行上丘逆行标记 RGC 后，细胞质内荧光金的存在不超过 3 周，标记后 12 天、14 天、21 天与标记后 37 天有明显差异随时间进展荧光金可能丢失荧光或被代谢［7］该实验于动物处死前 5 天行荧光金逆行标记上丘，标记的 RGC 呈金黄色强荧光，各象限均匀通过逆行标记 RGC 可以记录它的累积丢失，比通过凋亡标记（如 TUNEL 染色）更好，通过凋亡标记在一定的时间只能看到少量细胞［8］此标记方法广泛应用于 RGC 的发生和凋亡［9］、视网膜缺血［6］、视神经横断、视神经再生的研究该实验的标记方法为两点法双侧上丘注射，因为有 95%以上的大鼠 RGC 投射到上丘［10］，10%左右的 RGC 的轴突投射到同侧外侧膝状体因此，采用对侧上丘注射标记单眼 RGC 的方法并不可靠，至少有 10%的 RGC 不被标记上丘注射法还包括一点法［10］、三点法［11］以往我们也采取过每侧上丘注射一点的标记方法，发现这种方法能够成功标记 RGC 的比率比较低，而且对注射精度要求高，注射点必须位于上丘中心（前囟后 5.3mm 中线外 2mm，深 4.5mm）。
如果注射偏离上丘中心位置，将导致视网膜 RGC 标记的不均匀改用双侧上丘两点注射法标记出的 RGC 分布均匀，对视网膜各象限 RGC 数的统计学检验差异无显着性另外发现 RGC 数量从中心到视网膜周边并没有大幅度衰减三点标记法耗时长、增加动物感染机会、损伤较两点法重比较上丘一点注射法、两点注射法和多点注射法，认为两点注射法效率高，标记良好，有比较好的稳定性实验证明用荧光金逆行标记上丘方法来标记 RGC，是实验条件下研究 RGC数量动态变化的可靠、有效方法 图 1 距视盘 2mm RGC 荧光照相（125×）图 2 全视网膜 RGC 荧光照相【参考文献】1 Schwartz M， Belkin M， Yoles E， et al. Potential treatment modalities for glaucomatous neuropathy： neuroprotection and neuroregeneration . J Glaucoma， 1996，5： 427-432. 2 Kondo Y， Takada M， Honda Y， et al .Bilateral projections of single retinal ganglion cells to the lateral geniculate nuclei and superior colliculi in the albino rat. Brain Res， 1993，608(2)： 204-215. 3 Farid Ahmed AK， Dong K， Setsu T， et al. Correlation between different types of retinal ganglion cells and their projection pattern in the albino rat. Brain Res， 1996，706(1)： 163-168. 4 Farid Ahmed AK，Dong K， Hanna-Georges FB， et al. Retrograde double-labeling study of retinal ganglion cells from the ipsilateral VLGN and SC in the albino rat. Neurosci Lett， 1998，244(1)： 47-51. 5 Levkovitch-Verbin H， Harris-Cerruti C，Groner Y， et al. RGC death in mice after optic nerne crush injury： oxidative stress and neuroprotection. Invest Ophthalmol Vis Sci， 2000，41(13)： 4169-41。