本文格式为Word版,下载可任意编辑木聚糖酶检测方法    木聚糖酶活力的测定    分光光度法    1 原理    木聚糖酶能将底物木聚糖(本测验采用Xylan from oat spelt,燕麦木聚糖,Sigma NO. :X0627)降解成寡糖和单糖,具有恢复性末端的寡糖和有恢复基团的单糖在沸水浴条件下可以与DNS试剂发生显色回响回响液颜色的深浅与酶解产生的恢复糖量成正比,而恢复糖的生成量又与回响液中木聚糖酶的活力成正比因此,通过分光比色测定回响液颜色的强度,可以计算待测木聚糖酶的活力 2 木聚糖酶活力单位(U)的定义    在40℃、pH值为5.0的条件下,1.0 min从浓度为5 mg/mL的木聚糖溶液中降解释放1 μmol恢复糖(以木糖表示)所需要的酶量为一个酶活力单位(U)其中样品的酶活力以 U / g(固体酶)或U / mL(液体酶)表示     桦木木聚糖(Xylan from birch wood)山毛榉木聚糖(Xylan from beechwood) 3  主要仪器 3.1 分光光度计 3.2 细致电子天平    精确至0.0001 g 3.3 恒温水浴锅    30-60℃可调,精度为0.1℃。
  
                             3.4 酸度计    精确至0.01 3.5 秒表    每小时误差不超过5s 3.6 刻度试管(15mL)    带玻璃塞,10支以上 3.7 移液管(0.5、1、2、5、10mL) 3.8 分样筛    孔径为0.25 mm(60目)    3.9 分析天平    精确至0.001 g 3.10 磁力搅拌器    附加热功能 3.11 电磁振荡器 3.12 烧结玻璃过滤器    孔径为0.45 μm 3.13 离心机    3000 r/min 3.14 冰箱 4 试剂与溶液配制    除特殊说明外,所用的试剂均为分析纯,水均为符合GB/T6682中规定的二级水 4.1 氢氧化钠(NaOH)溶液(浓度为200 g/L)    称取氢氧化钠20.0g,加水溶解,定容至100mL 4.2 乙酸(CH3COOH)溶液(浓度为0.1 mol/L)    吸取冰乙酸0.60mL,加水溶解,定容至100mL 4.3 乙酸钠溶液(CH3COONa)(浓度为0.1 mol/L)    称取三水乙酸钠1.36g,加水溶解,定容至100mL    4.4 乙酸——乙酸钠(CH3COOH — CH3COONa)缓冲溶液(浓度为0.1 mol/L,pH为5.0)    称取三水乙酸钠19.17 g,参与冰乙酸3.60 mL。
  
                            再加水溶解,定容至2000 mL测定溶液的pH值假设pH值偏离5.0,再用乙酸溶液(4.2)或乙酸钠溶液(4.3)调理至5.0用细致pH试纸检定    4.5 木糖(C5H10O5)溶液(浓度为10.0 mg/mL)    称取无水木糖1.000 g,加乙酸——乙酸钠缓冲溶液(4.4)溶解,定容至100 mL 4.6 木聚糖溶液(浓度为10.0g/L)    称取木聚糖(Sigma X0627)1.00 g,参与0.32g氢氧化钠,再参与90 mL水,磁力搅拌,同时缓慢加热,直至木聚糖完全溶解然后中断加热,持续搅拌30 min,参与0.8 mL冰乙酸持续磁力搅拌,测定其pH值假设pH值为5.0,用乙酸——乙酸钠缓冲溶液(4.4)定容至100 mL假设pH值偏离5.0,再用乙酸溶液(4.2)或乙酸钠溶液(4.3)调理至5.0,   然后再用乙酸——乙酸钠缓冲溶液(4.4)定容至100 mL木聚糖溶液能立刻使用,使用前适当摇匀4℃避光保存,有效期为3天 4.7  DNS试剂    称取3,5-二硝基水杨酸3.15 g(化学纯),加水500 mL,搅拌5 s,水浴至45℃然后逐步参与100 mL氢氧化钠溶液(4.1),同时不断搅拌,直到溶液清澈通明(留神:在参与氢氧化钠过程中,溶液温度不要超过48℃。
  
                            再逐步参与四水酒石酸钾钠91.0 g、苯酚2.50 g和无水亚硫酸钠2.50 g持续45℃水浴加热,同时补加水300 mL,不断搅拌,直到参与的物质完全溶解中断加热,冷却至室温后,用水定容至1000mL用烧结玻璃过滤器过滤取滤液,储存在棕色瓶中,避光保存室温下存放7天后可以使用,有效期为6个月 4.8 乙酸——乙酸钠2号缓冲溶液    量取100mL乙酸——乙酸钠1号缓冲溶液,参与0.15gTriton X-100(曲拉通100),0.15g牛血清白蛋白(BSA)混合平匀假设pH值偏离5.0,再用乙酸溶液(4.2)或乙酸钠溶液(4.3)调理至5.0 5 标准曲线的绘制    吸取乙酸——乙酸钠缓冲溶液(4.4)2.0 mL,参与DNS试剂(4.7)3.0 mL,沸水浴加热5 min用自来水冷却至室温,用水定容至15.0 mL,制成标准空白样    分别吸取木糖溶液(4.5)3.00、4.00、5.00、6.00 7.00和8.00mL,分别用缓冲溶液(4.4)定容至100 mL,配制成浓度为300、400、500、600、700、800 μg/mL木糖标准溶液 木糖系列浓度150 (μg/mL) 200 250 300 350 400 分别吸取上述浓度系列的木糖标准溶液各1.00 mL(做三个平行),分别参与到刻度试管中,再分别参与1.0 mL缓冲液(4.4)(终浓度分别为:0,150,200,250,300,350和400μg/mL)和3.0 mL DNS试剂(4.7)。
  
                            振荡3 s,沸水浴加热5 min然后用自来水冷却到室温,再用蒸馏水定容至15 mL以标准空白样为对照调零,在540 nm处测定吸光度OD值    以木糖浓度为Y轴、吸光度OD值为X轴,绘制标准曲线每次新配制DNS试剂均需要重新    表一:木糖标准曲线制作数据记录    1号管       2号管 OD540nm 3号管             平均            用EXCEL 线性回归,得到回归方程,用于后续酶活力的计算:    y(μg/mL)=a·OD540nm + b  --------------------------------------------------(2) 得:  a=      ;         b=      .    6 试样溶液的制备    固体样品应粉碎或充分碾碎,然后过60目筛(孔径为0.25 mm),称取1.000g样品,精确至0.001 g参与40 mL乙酸——乙酸钠缓冲溶液(4.4)高速磁力搅拌30 min,再用缓冲溶液(4.4)定容至100 mL上离心机(3.13)4000r离心3min,取上清液,再用缓冲溶液(4.4)做适当稀释(吸光度OD540nm值应操纵在0.2-0.6之间,否那么需重新稀释再做)。
  
                                (注:当以麸皮或玉米芯份做载体的样品时,应使用乙酸——乙酸钠2号缓冲溶液(4.8)抽提,但应使用乙酸——乙酸钠1号缓冲溶液(4.4)稀释    液体样品可以直接用乙酸——乙酸钠缓冲溶液(4.4)举行稀释、定容(稀释后吸光度在0.2-0.6之间)假设稀释后酶液的pH值偏离5.0,需要用乙酸溶液(4.2)或乙酸钠溶液(4.3)调理校正至5.0,然后再用缓冲溶液(5.4)做适当稀释定容 7 测定步骤    吸取10.0 mL木聚糖溶液(5.6),40℃平衡10 min 吸取10.0 mL经过适当稀释的酶液,40℃平衡10 min 酶空白样制作:    吸取1.00 mL经过适当稀释的酶液(已经过40℃平衡),参与到刻度试管中,再参与3mL DNS试剂(4.7),电磁振荡3 s然后参与1.0 mL木聚糖溶液(4.6),40℃回响20 min,沸   水浴加热5 min用自来水冷却至室温,加水定容至15 mL,电磁振荡3 s以此作为回响空白调零    酶回响样制作(需作3个平行):    吸取1.00 mL经过适当稀释的酶液(已经过40℃平衡),参与到刻度试管中,再参与1.0 mL木聚糖(4.6)(已经过40℃平衡),电磁振荡3 s,40℃精确保温20 min。
  
                            参与3.0 mL DNS试剂(4.7),电磁振荡3 s,以终止酶解回响沸水浴加热5 min,用自来水冷却至室温,加水定容至15 mL,电磁振荡3 s以酶空白样为调零,在540 nm处测定吸光度A跟据回归方程计算出恢复糖量,即y值           8 试样酶活的计算                      Y × N × 2    XD =                             ------------------------(2)                  20  × 150    XD — 试样稀释液中木聚糖酶的活力,U/mL或者U/g;    Y — 根据样品吸光度OD540nm,用回归方程计算出的恢复糖量(即y值),单位为:μg/mL; N — 从固体样品到测定前最终液的总稀释倍数; 2  —  酶促回响体积为2.0 mL 150 —木糖分子量,转化为μmol; 20 — 酶解回响效时间20,min;     酶活力的计算值留存三位有数字        表二:样品活力测定结果数据记录    木聚糖酶活力 酶样 OD540nm (U/g酶样) 样品1   样品2   样品3   平均 注:由公式2的回归方程求出结果。
  
                             9  重复性      每个试样应取二份平行样举行分析测定,相对误差不超过8.0%,二者的平均值为最终的酶活力测定值(留存三位有效数字)      — 7 —。