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饲料中粗蛋白测定方法

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饲料中粗蛋白测定方法_第1页
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饲料中粗蛋白测定方法1、 原理凯氏法测定试样中的含氮量, 即在催化剂作用下, 用硫酸破坏有 机物,使含氮物转化成硫酸铵加入强碱进行蒸馏使氨逸出,用硼酸 吸收后,再用酸滴定,测出氮含量,将结果乘以换算系数 6.25,计算出粗蛋白含量2、试剂2.1 硫酸( GB 625):化学纯,含量为 98%,无氮2.2混合催化剂:0.4g硫酸铜,5个结晶水(GB 665),6g硫酸钾(HG 3 —920)或硫酸钠( HG 3—908),均为化学纯,磨碎混匀2.3 氢氧化钠( GB 629):化学纯,40%水溶液( m/V)2.4硼酸(GB 628):化学纯,2%水溶液(mN )2.5 混合指示剂:甲基红( HG 3—958) 0.1%乙醇溶液,溴甲酚绿 (HG 3—1220) 0.5%乙醇溶液,两溶液等体积混合,在阴凉处保存期为三个月2.6 盐酸标准溶液:邻苯二甲酸氢钾法标定,按 GB 601制备2.6.1 盐酸标准溶液:c (HCl) =0.1mol/L8.3mL 盐酸(GB 622,分 析纯),注入 1 000mL 蒸馏水中2.6.2 盐酸标准溶液:c( HCl)=0.02mol/L1.67mL 盐酸(GB 622, 分析纯),注入 1 000mL 蒸馏水中。

2.7蔗糖(HG 3—1001):分析纯2.8 硫酸铵( GB 1396):分析纯,干燥2.9硼酸吸收液:1%硼酸水溶液1 OOOmL,加入0.1%溴甲酚绿乙 醇溶液 10mL, 0.1%甲基红乙醇溶液 7mL, 4%氢氧化钠水溶液 0.5mL, 混合,置阴凉处保存期为一个月(全自动程序用) 3、 仪器设备3.1 实验室用样品粉碎机或研钵3.2分样筛:孔径0.45mm (40目)3.3 分析天平:感量 0.0001g3.4 消煮炉或电炉3.5 滴定管:酸式, 10、25mL3.6 凯氏烧瓶: 250mL3.7 凯氏蒸馏装置:半微量水蒸气蒸馏式3.8 锥形瓶: 150、250mL3.9 容量瓶: 100mL3.10 消煮管: 250mL3.11 定氮仪:以凯氏原理制造的各类型半自动4、 试样的选取和制备选取具有代表性的试样用四分法缩减至 200g,粉碎后全部通过40目筛,装于密封容器中,防止试样成分的变化5 分析步骤5.1.1 试样的消煮称取试样0.5〜1g (含氮量5〜80mg)准确至0.0002g,放入凯氏 烧瓶中,加入6.4g混合催化剂,与试样混合均匀,再加入12mL硫酸 和 2 粒玻璃珠,将 凯氏烧瓶置于电炉上加热,开始小火,待样品焦化,泡沫消失后,再加强火力 (360〜410C )直至呈透明的蓝绿色,然后再继续加热,至少 2h。

5.1.2 氨的蒸馏:将试样消煮液冷却,加入 20mL 蒸馏水,转入 100mL 容量瓶中, 冷却后用水稀释至刻度,摇匀,做为试样分解液将半微量蒸馏装置 的冷凝管末端浸入装有 20mL 硼酸吸收液和 2滴混合指示剂的锥形瓶 内蒸汽发生器 的水中应加入甲基红指示剂数滴,硫酸数滴,在蒸 馏过程中保持此液为橙红色, 否则需补加硫酸 准确移取试样分解液 10〜20mL 注入蒸馏装置的反应室中,用少量蒸馏水冲洗进样入口, 塞好入口玻璃塞,再加 10mL 氢氧化钠溶液,小心提起玻璃塞使之流 入反应室,将玻璃塞塞好,且在入口处加水密封,防止漏气蒸馏 4min 降下锥形瓶使冷凝管末端离开吸收液面,再蒸馏 1min ,用蒸馏 水冲洗冷凝管末端,洗液均流入锥形瓶内,然后停止蒸馏5.1.2.3 蒸馏步骤的检验精确称取0.2g硫酸铵,代替试样,按5.1.2步骤进行操作,测得 硫酸铵含氮量为 2 1 . 1 9± 0 . 2% ,否则应检查加碱、蒸馏和滴定各步骤 是否正确5.1.3 滴定用 5.1.2.1 或 5.1.2.2 法蒸馏后的吸收液立即用 0.1mol/L 或 0.02mol/L( 4.6.2)盐酸标准溶液滴定,溶液由蓝绿色变成灰红色为 终点。

6 、空白测定称取蔗糖0.5g,代替试样,按第5章进行空白测定,消耗O.1mol/L 盐酸标准溶液的体积不得超过 0.2mL消耗0.02mol/L盐酸标准溶液 体积不得超过 0.3mL7、 分析结果的表述7.1 计算见下式:粗蛋白质(%) = (V2-V1 ) • cx 0.0140X 6.25/ (mX V7 /V) X 100 式中:V2—— 滴定试样时所需标准酸溶液体积, mL;V1 滴定空白时所需标准酸溶液体积, mL;c 盐酸标准溶液浓度,mol/L ;m 试样质量,g;V——试样分解液总体积,mL;V 试样分解液蒸馏用体积,mL;0.0140——与I.OOmL盐酸标准溶液〔c (HCl) =1.000mol/L丨相当 的、以克表示的氮的质量6.25氮换算成蛋白质的平均系数7.2 重复性每个试样取两个平行样进行测定,以其算术平均值为结果 当粗蛋白质含量在 25%以上时,允许相对偏差为 1%当粗蛋白含量在10%〜25%之间时,允许相对偏差为2% 当粗蛋白质含量在 10%以下时,允许相对偏差为 3%。

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