动物组织rna提取及荧光定量pcr-精讲

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1、RNA提取及Q-PCR相关技术,主讲:宋志新,利用含有变性剂和Rnase抑制剂的有机溶剂提取RNA,是目前常用的RNA提取方法。 Trizol(主要成分为异硫氰酸胍和酚),具有极强的裂解能力,可在短时间内裂解细胞和组织样本,保持样品中RNA的完整性,有效抑制RNA的降解。样品在Total RNA Extraction Reagent中能够充分被裂解,在加入氯仿离心后,溶液会形成上清层、中间层和有机层 (鲜红色下层),RNA分布在上层水相中,收集上清层后,经异丙醇沉淀便可以回收得到Total RNA。提取的总RNA纯度高,基本不含蛋白质及基因组DNA,提取的RNA可直接用于Northern,点杂

2、交,mRNA纯化,体外翻译,RT-PCR,以及构建cDNA文库等各种分子生物学实验。 Total RNA Extraction Reagent广泛适用于培养细胞、动物组织、微生物等。 下面介绍动物组织Total RNA的提取方法,RNA提取,RNA 提取,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,概要,RNA提取,概要,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,实验材料 1、组织(以小鼠肝脏为例) 2、RNAiso Plus(Code No: 9108)(作用同TRIzol) 3、其他:氯仿、异丙醇、75%乙醇、研钵、加样器、1.5ml EP管、枪头等。(均为RNase-free),

3、0.1%DEPC水,有毒,RNA提取,概要,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,准备工作 戴口罩、手套、帽子 提取区域:用75%乙醇擦拭试验台 试验器具:用75%乙醇擦拭加样枪 准备RNase-free的枪头和离心管 低温离心机预冷至4 准备-20预冷的75%乙醇,RNA提取,概要,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,RNA的提取步骤 1、从小鼠体内取出肝脏,用预冷的生理盐水清洗。 2、使用液氮迅速冷冻组织, -80冰箱保存。 3、使用液氮充分预冷研钵。 4、将称重冷冻的组织(约50-100mg)从冰箱取出后迅速放入预冷好的研钵中,用研杵研磨组织,期间不断加

4、入液氮,直至组织被研磨成粉末状。(注:无明显的可见颗粒,如果研磨不彻底会影响RNA的收率和质量。),RNA提取,概要,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,RNA的提取步骤 5、向研磨成粉末状的样品中加入1ml RNAiso Plus,并完全覆盖样品。(注:在加入RNAiso Plus时要保证组织没有融化,否则RNA易被RNase降解。) 6、室温静置510 min。 7、待样品融化后,用研杵继续研磨至裂解液呈透明状。将匀浆液转移至1.5ml EP管中,室温静置5 min后,4,13000rpm离心5 min,将上清转移至新的1.5ml EP管中。,RNA提取,概要,RT-PC

5、R,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,RNA的提取步骤 8、每1ml液体中加入1/5体积(约200l)的氯仿,盖紧EP管,用手剧烈震荡15秒,直至溶液充分乳化,无分相现象。(注:不能用振荡器混匀,因为容易造成DNA和RNA的物理降解。) 9、室温静置5 min,4,13000rpm离心15 min。 10、从离心机中小心取出EP管,此时匀浆液分为三层,上层是透明的水层,RNA溶解在此层中;半固体状的中间层,此层 中包含DNA;下层为粉红色的 有机溶剂,蛋白质、多糖等物 质溶解在此层中。,RNA提取,概要,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,RNA的提取步骤 11、将上层

6、水相溶液小心转移至新的EP管中,大约每个EP管中能取出400500l,谨慎操作,切勿吸到中间层。 (注:下层有机废液勿乱丢,收集起来统一进行无毒化处理。) 12、加入等体积异丙醇,上下颠倒EP管,充分混匀。 13、室温静置10 min后,4,13000rpm离心10 min。可在离心后的EP管底部观察到少量的白色沉淀。,RNA提取,概要,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,RNA的提取步骤 14、小心弃去上清。 15、向含有沉淀的EP管中缓缓加入1ml预冷75%乙醇,轻轻上下颠倒,清洗沉淀。(动作轻柔,无需将沉淀悬浮起来) 16、4,13000rpm离心5 min。用移液器除

7、去上清。 17、将EP管瞬时离心,用移液器仔细将残存在EP管底部的少量液体除去。,RNA提取,概要,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,RNA的提取步骤 18、打开EP管,室温放置干燥(目的是让残留的乙醇挥发,乙醇的残留可能对后续的反应有影响)。干燥的时间不宜太久,RNA完全干燥后很难溶解 19、用RNase-free ddH2O溶解沉淀。(视RNA量的多少所加RNase-free ddH2O的体积从20-200不等,肝脏组织RNA产率较高,肺组织产率低) 20、RNA溶液保存在-80冰箱中。,RNA提取,概要,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,RNA的浓

8、度及质量检测 1、浓度及纯度检测: (Thermo SCIENTIFIC NANODROP 1000 Spectrometer ) 核酸在260nm附近有强吸收,蛋白质在280nm附近有强吸收。所以测定溶液在260nm和280nm下的吸光度,根据A260计算提取的核酸量,根据A260/A280的比值评价提取的核酸纯度。 理想的RNA纯度A260/A280应在1.82.2范围内。 低离子强度或低pH值会使OD280升高,从而使OD260/OD280值低(1.65),RNA提取,概要,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,RNA的浓度及质量检测 2、质量检测凝胶电泳法 利用1%的琼

9、脂糖凝胶进行电泳,如果可以清晰观察到两条rRNA条带(真核生物:28S和18S;原核生物:23S和16S),且其浓度比值大约为2:1,则RNA未降解。 若观察到smear现象,或比值小于2:1,则RNA已发生降解。 如果观察到大于28S或23S的条带,则样品可能有基因组DNA污染,这时可以考虑使用DNase I处理。,若有条带,可能混入了基因组DNA,28S rRNA,18S rRNA,tRNA等,DL2000 DNA Marker 电泳图(1%琼脂糖胶,TAE),RNA提取,概要,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,RNA的浓度及质量检测 2、质量检测凝胶电泳法 实验材料:

10、 a. 提取的RNA溶液 b. DL2000 DNA Marker c. 6Loading Buffer d. 1%的琼脂糖凝胶(加1l Goldview/20ml凝胶) e. 1TAE Buffer f. 电泳仪 g. UV凝胶成像仪,RNA提取,概要,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,RNA的浓度及质量检测 2、质量检测凝胶电泳法 实验操作: 1)取10l RNA原液至一个1.5ml EP管中,使用RNase-free ddH2O将其稀释至200ng/l。 注:需RNase-free ddH2O体积(l)=10lRNA浓度(ng/l) /200(ng/l)-10l 2)

11、取5l RNA(200 ng/l)至一个小 EP管中,以供电泳使用。 (注:剩余部分于-80保存备RT反应用) 3)将上步的RNA 70加热2 min。 4)冰上冷却。,RNA提取,概要,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,RNA的浓度及质量检测 2、质量检测凝胶电泳法 实验操作: 5)向每管中加入1l 6Loading Buffer,混合均匀。 6)将琼脂糖凝胶放入到电泳槽中。 7)导入1TAE Buffer,完全浸过胶面。 8)点样:将管内样品全部加入到一个凝胶孔里。 9)电泳:100-120V,约20-30分钟。 10)凝胶成像。,RNA提取,概要,RT-PCR,Q-P

12、CR,注意事项总结,RNA 提取,RNA产率估计,RNA提取,概要,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,RNA 提取,RNA降解,巨噬细胞RNA,巨噬细胞RNA,动物组织RNA,逆转录PCR(RT-PCR),概要,RNA 提取,RT-PCR,注意事项总结,Q-PCR,反转录(RT)反应 RNA自身不能作为PCR反应的模板,所以必须先将其反转录为cDNA。 实验操作: 1)将提取的RNA调整浓度为500ng/l,并于70变性2min。 2)配反应体系(注意:不同的试剂盒体系不同,我们用的是TaKaRa的RR037A) 20l体系 5x Buffer 4l Oligo dT Primer 1l

13、 Random 6 mers 1l DEPC H2O 1l Enzymermix 1l 提取的RNA模板 2l,逆转录PCR(RT-PCR),概要,RNA 提取,RT-PCR,注意事项总结,Q-PCR,反转录(RT)反应 实验操作: 1)RT-PCR程序: 37, 15min 85, 5s 4, ,反转录过程,使反转录酶失活,得到的cDNA短期可在4保存数天,长期保存应在-20以下,荧光定量PCR(Q-PCR),概要,RNA 提取,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号累积实时在线监测整个反应进程,并结合相应的软件对未知模板进行定量分析的方法。,荧

14、光定量PCR(Q-PCR),概要,RNA 提取,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,荧光定量PCR(Q-PCR),概要,RNA 提取,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,荧光定量PCR(Q-PCR),概要,RNA 提取,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,QPCR,双标记探针(Taqman Probe),荧光报告基团 (Reporter),荧光淬灭基团 (Quencher),序列特异性,寡核苷酸探针,游离状态下,FRET效应,不发荧光,伴随产物生成,荧光积累,双标记探针(Taqman Probe),荧光定量PCR(Q-PCR),概要,RNA 提取,RT-PCR,Q-PCR,注意事项

15、总结,QPCR,注意事项总结,概要,RNA 提取,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,常见问题及疑难解答 提取RNA收率低 当收率明显低于预期时,可以考虑以下原因: 1)加入Trizol或RNAiso Plus后样品匀浆不充分; 2)分层时水相回收率低; 3)RNA沉降后与水复溶性不好; 4)异丙醇沉降或洗涤过程中混入Rnase。,注意事项总结,概要,RNA 提取,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,常见问题及疑难解答 提取的RNA难以溶解 1)75%乙醇清洗沉淀后不要干燥时间过长或加热干燥; 2)若难溶可以于60加热5分钟后再于冰上溶解数小时。,注意事项总结,概要,RNA 提取,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,常见问题及疑难解答 提取的RNA降解 1)提取RNA应采用新鲜的组织材料,或者用液氮迅速冷冻后置于-80保存的组织材料。 2)提取RNA使用的试剂及器具中可能混有Rnase; 3)提取的组织材料中含有大量的Rnase,提取时应提高Trizol或RNAiso Plus的使用量。 4)RNA提取应有专门的区域,使用无酶的枪头、EP管,带口罩、帽子、手套,并在操作中更换新手套。跑电泳时每次将槽子洗干净,换新的TAE缓冲液。,Thank you!,RNA提取,RNA 提取,RT-PCR,Q-PCR,注意事项总结,概要,宋志新 Tel:15922761761,

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