急性毒性及其评价方法

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1、急性毒性及其评价方法,Acute Toxicity Testing,一、急性毒性的概念,急性毒性:是指机体(人或实验动物)一次或24小时内多次接触外源化学物后在短期内所产生的毒性效应。 包括外观改变、大体形态变化、行为方式及死亡效应,最主要观察指标是LD50,实验动物接触化学物的方式或途径不同, “一次”的含义也有所不同 经口和注射接触,“一次”是指在瞬间将受试化学物输入实验动物体内 经呼吸道吸入与经皮肤接触,“一次” 是指在一个特定的期间内实验动物持续地接触受试化学物的过程,二 、急性毒性试验的目的,1. 测试和求出受试化学物的致死剂量 (通常以LD 50 为主要参数),并对该外源化学物进行

2、急性毒性分级 2. 通过观察动物中毒作用表现、毒作用强 度和死亡情况,初步评价毒物对机体的毒效应特征、靶器官、剂量反应关系和对人体产生损害的危险性,3. 为亚慢性及慢性毒性试验研究以及其他 毒理试验提供接触剂量和观察指标选择的依据 4. 为毒作用机理研究提供线索,了解中毒 效应的特征(包括症状,生理、生化与组织病理损伤) 5. 研究化学物急性中毒诊断、预防和急救 治疗措施,三、急性毒性试验方法的要点,(一) 实验动物选择 选择实验动物的原则: 尽量选择急性毒性反应与人近似的动物 易于饲养,试验动物操作方便 繁殖生育力较强,数量较大能够保障供应 价格较低,易于获得动物 常用实验动物为大白鼠和小白

3、鼠,性别, 急性毒性试验所用的动物应当是雌、雄各半 如果在研究中发现待测化学物对雌、雄动物的毒性大小有明显差异时,应分别求出雌性与雄性动物各自的LD 50 值 如果试验是为致畸试验作剂量准备,也可仅做雌性动物的LD 50 试验,实验动物分组和数量,在利用不同的方法测定化学物LD 50 时,实验设计中对动物数的要求不同 霍恩氏法测 LD 50 时要求有 4个剂量组, 每组4或 5只动物 改进寇氏法、概率单位法、Bliss法测定则要求57个 剂量组,每组10只动物或10只以上 对于不同的化学物测定应根据其相应的试验规程确定实验动物数量,动物分组的原则:均衡性和随机性,均衡性:要求各组动物的平均体重

4、及体重的离散度尽可能一致。具体来说是: (1)实验动物的体重不应超过全体实验动物平均体重的10-控制离散度 (2)每组之间的平均体重相差不应超过 5 -控制均衡性 随机性:每只动物分散到各组去的机会是均等的,以避免成见或系统误差,实验动物的预处理,适应性饲养一周,选择生理健康的动物 凡经口染毒时,要求试验前要对动物禁食,以保证胃内无食物,减少食物对化学物毒性的干扰 大鼠、小鼠隔夜进食;染毒后禁食4h 大动物每日上午喂食前染毒 染毒后继续禁食24h,但在禁食时要保障饮水,(二) 受试物及处理,受试物的接受、分样、保管、称重、配制 以及在此过程中严格的质量保证影响急性 毒性试验 受试物剂型:水溶液

5、、混悬液、油溶液,(三) 染毒方法,1. 经口(胃肠道)染毒: (1)灌胃: 空腹 灌胃后2-3 h复食 灌胃的体积不超过体重的1-2: 小鼠为 0.21.0ml/只或0.10.5ml/10g较合适 大鼠为5ml/只(通常用0.51.0ml/100g) 家兔为10ml/2kg体重,狗不超过50ml/10kg,灌胃器具制作,取l2号普通注射针头,首先将针头尖部去掉,然后用细锉刀把去掉部分锉平、锉光,再用沙纸磨光滑,有条件时可在针尖处点焊成球型。加工成有20度弧度的灌胃针,连接1ml或5ml的注射器,即成为大小鼠的灌胃器。,灌胃操作方法,先固定动物,即用右手将小鼠尾巴提起,置于鼠笼或粗糙的平面上,

6、当小鼠向前挣扎时,用左手的拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤,翻转小鼠置于掌心,拉直后肢,以小指压住小鼠尾巴即可。在固定小鼠过程中,不要用力过大,勿握其颈部,以免窒息死亡。 以灌胃器轻轻压其头部,使口腔与食道成一条直线,再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道,当灌胃针进入约3cm左右时即达胃内。,2. 经呼吸道接触,在常温、常压下为气态,或在生产过程中 和生活过程中以蒸气、气溶胶、烟、粉尘 状态污染生产与生活环境空气,此时就有 可能经呼吸道吸入。 吸入接触分为两种方式 : 静式吸入 动式吸入,3. 经皮肤染毒, 研究外源化学物经皮肤吸收应当尽量选择皮肤解剖、生理与人类较近似的动物为对象,目前多选用家兔和

7、豚鼠 但由于研究化学物经皮肤吸收的毒性 (求经皮LD 50 )所需的实验动物较多,使用家兔、豚鼠不够经济,也常用大鼠代替,4. 经注射染毒,(四) 试验程序,1、查阅文献 首先了解分析受试化学物的化学结构和其理化性质,依此查阅文献, 找出与受试化学物化学结构与理化性质近似的化学物的毒性资料,并以文献资料中相同的动物种系和相同接触途径所测得的LD50(LC50)值作为受试化学物的预期毒性中值。,2、预试验, 以此预期毒性中值为待测化学物的中间剂量组,再上下各推12个剂量组做预试验(每个剂量组间的组距可以大些,有利于找出受试化学物的致死剂量范围) 根据确定的剂量组进行染毒 根据预试验的死亡资料确定

8、组距 可根据以下公式计算出剂量分组: i=(lgLD90-lgLD10)(n-1) 或:i=(lgLD100-lgLD0)(n-1) 式中i为组距(相邻的两个剂量组对数剂量之差); n为设计的剂量组数。,3、正式试验,一般来说,根据试验设计所选用的LD50计算方法来确定组数。例如改良寇氏法一般设57个剂量组;霍恩法固定设4个剂量组。求得i后,以最低剂量组(LD0或LD10)的对数剂量加上一个i值,即是第二个剂量组的对数剂量,依此类推直至最高剂量组,查各自的反对数即得出各组剂量的真实值。 1 2 3 4 5 6 LgLD0 LgLD0+i LgLD0+2i LgLD0+3i LgLD0+4i ,

9、4. 症状观察,(1) 观察时间和周期 测定外源化学物的LD 50 (LC 50 ),一般要 求计算实验动物接触化学物之后两周 (14天)内的总死亡数 对于一些速死性化学物求其LD 50 (LC 50 ) 也可仅计算24小时的死亡率(有些速杀性化学物的24小时LD 50 与两周 LD 50 值往往没有差别 ) 应注明是多少时间的LD 50 值,以便于在进行毒性比较时有共同的基础,(2) 中毒体症和发生过程观察,很多化学物在实验动物接触的初期往往先出现兴奋现象,有的化学物在动物接触的初期首先表现为抑制现象,(3)死亡情况和时间分布:计算LD 50,重点观察和记录每只动物死亡的时间,特别是最早出现

10、死亡的时间以及各个剂量组动物的死亡数。分析中毒死亡时间的规律具有一定意义,可为深人研究化学物的毒作用机制提供参考。,(4)体重:,体重可以反映动物中毒后的整体变化。体重改变的原因很多,若化学毒物刺激或损伤消化道可出现试验动物饮食减少甚至拒食,表现为体重减轻;若化学毒物引起腹泻,将影响食物吸收和利用,体重也会减轻。如果化学毒物影响水的摄取或肾功能急性损伤,也可能在体重上反映出来。所以,对存活动物尤其是对低于LD50剂量组的存活动物,应在观察期14天内称量其体重的变化,以便了解受试物引起毒效应的持续时间。,(5)病理检查和其它指标观察,凡中毒死亡动物应及时解剖做病理学检查,检查器官有无充血、出血、水肿或其它改变,并对有变化的脏器作病理组织学检查 对存活动物于观察期结束后应做病理学检查 根据试验需要可进行某些生化指标测定等,经典急性毒性试验的局限性,消耗的动物量大 获得的信息有限 测得的LD50是一个统计近似值 在安全性评价中仅评价动物死亡和简单的症状观察是不够的,更需要的是生理学、血液学及其它化验检查所提供的深入细致的毒性信息。,急性毒性替代试验,固定剂量法 上下移动法,四、急性毒性分级和评价,

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