实验四 植物抗逆性的测定

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1、实验 植物抗逆性的测定(电导仪法)一 实验目的 进一步理解和认识逆境胁迫对植物细胞膜透性的影响,了解电导法在植物逆境生理与抗性育种研究中的应用范围。二、实验原理 在正常生长状况下,植物细胞膜保持着良好的选择透性,而当植物组织受到逆境(例如干旱、低温、高温、盐渍等)伤害时,由于膜脂过氧化、膜蛋白变性及膜脂流动性改变,造成膜相变和膜结构破坏,使得细胞膜透性增大,从而使细胞内的电解质外渗,以致植物细胞浸提液的电导率增大。膜透性增大的程度与逆境胁迫强度有关,胁迫强度越大,伤害越重,外渗越多,电导率的增加也越大。同时也与植物抗逆性的强弱有关,抗性越强,伤害越轻,外渗越少,电导率的增加也越小。所以,通过测

2、定外渗液电导率的变化,就可以反映出细胞膜的伤害程度和所测材料抗逆性的大小。 三、材料、仪器和试剂 1. 材料:各种植物叶片(如丁香、小麦等)2. 仪器设备:电导仪;天平;恒温箱;真空干燥器;抽气机;恒温水浴锅;烧杯;剪刀或打孔器;吸水纸;纱布等。3.试剂:去离子水四、实验步骤 1容器的洗涤: 电导法对水和容器的洁净度要求严格,所用容器必须彻底清洗,再用去离子水冲净,倒置于洁净滤纸上备用。2试验材料的处理: 选取正常生长的小麦或其他植物相同部位叶片若干,剪下后,先用纱布拭净,分成 2份,将其中一份放置 50左右的恒温箱中处理 30min,进行逆境胁迫处理。另一份放置在室温下作对照。3. 测定步骤

3、(1) 将处理组叶片与对照组叶片用去离子水冲洗 2 次,再用洁净滤纸吸净表面水分,各称取 2g,然后剪成长约 1cm 小段放入小烧杯中(大小以够容电极为度) ,并用玻璃棒压住,在杯中准确加入蒸馏水 20ml,浸没叶片。 将其放入真空干燥器中,用抽气机抽气 78min以抽出细胞间隙中的空气;重新缓缓放入空气,水即被压入组织中而使叶片下沉。 (注:材料为阔叶时,最好使用打孔器取材)(2) 将抽过气的小烧杯取出,放在实验桌上静置 20min,然后用玻棒轻轻搅动叶片,在2025恒温下,用电导仪分别测定处理组和对照组得电导值为 T1 和 C1。 (3) 测过电导率之后,再放入 100沸水浴中 15min

4、,以杀死植物组织,取出待其冷却至25时测其煮沸电导率,分别为 T2 和 C2。 五、实验结果伤害率(%)计算式为:1t2TL0%= 12CLck0%= 式中 Lt处理叶片的伤害率; Lck对照叶片的伤害率。在电导率测定中一般应用去离子水,若制备困难可用普通蒸馏水代替,但需要设一空白(蒸馏水作空白),测定样品时同时测定空白电导值,计算时各电导值需减去相应的空白电导值。六、思考题. 测定电导率时为何反复清洗仪器和样品?实验 植物组织水势的测定(小液流法)一、实验目的 验证植物组织水分移动方向由水势决定;掌握小液流测组织水势的方法。植物体内的生理生化活动与其水分状况密切相关,而植物组织的水势是表示植

5、物水分状况的一个重要生理指标。目前,植物组织水势的测定主要有几种方法:小液流法、折射仪法、压力室法、热电偶湿度计法等。压力室法较适于测定枝条或叶柄导管的水势。热电偶湿度计法较适宜测定柔软叶片的水势,且精确度高,可在一定范围内重复测定叶片的水势,是较好的水势测定方法。小液流法具有操作简便、反应灵敏、结果可靠、费用低廉诸多优点,因而在我国目前的许多研究中,测定植物组织水势仍以小液流法为主要方法之一,同时该法也是校验其它方法的一个基准方法。二、实验原理将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中,当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时,这时可认为此植物组织的水势数值上等于该溶液的渗透势(溶

6、质势) 。因溶液的浓度是已知的,可以根据公式算出其渗透压取其负值,即为溶液的渗透势( ) ,代表植物的水势( w) (water potential) 。三、材料、仪器和试剂1. 材料:植物叶片或马铃薯块茎等。2. 仪器:试管、青霉素小瓶 9 个;打孔器;镊子;移液管;烧杯;毛细滴管;刀片。2. 试剂:1molL 1 CaCl2 母液;甲烯蓝粉末。四、实验步骤1 系列 CaCl2 溶液浓度配制(1)取干燥洁净试管 9 个,贴上标签,编号,用 1molL1 CaCl2 母液配成0.05、0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4、0.45molL 1 浓度的 CaCl2 溶液,

7、各管总量为10ml,并塞上塞子(防止浓度改变) ,作为甲组。(2)另取干燥洁净的小瓶 9 个,贴上标签,编号,标明0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、 0.30、0.35、0.4、0.45molL 1 浓度,分别从甲组取相应浓度CaCl2 溶液 2.5ml 盛于小瓶中,作为乙组。2 取样及测定(1)选取生长一致的叶片,用直径为 0.5cm 的打孔器钻取圆片,在玻璃皿内混匀,然后用镊子把圆片放进乙组小瓶中,每瓶放 1520 片, (若采用植物块茎如马铃薯,先用打孔器钻取圆条,然后切成约 1mm 厚圆片,每瓶放 5 片) ,放置 30min 左右 ,其间轻轻摇动 3 次,以加速平衡。

8、(2)到预定时间后,各小瓶加入微量甲烯蓝粉染色,摇匀,取毛细滴管,分别从乙组中取出溶液,插入甲组原相应浓度 CaCl2 溶液的中部,轻轻挤出滴管内的溶液一滴,并小心地抽出滴管(注意勿搅动溶液) ,注意观察小液滴升降动向。如果某一管中的小液滴悬浮不动,植物组织的水势等于该浓度溶液的水势,根据公式算出该溶液水势也即得出植物组织水势 。若前一浓度溶液小液流下沉,而后一浓度溶液中上浮,则组织的水势值介于两浓度溶液水势之间,可取平均值计算。五 实验结果按下表记录实验结果。表 1-1-1 系列浓度 CaCl2 溶液的配置和实验结果记录需配 CaCl2 溶液浓度(molL 1 )1 molL1 CaCl2

9、溶液(ml)蒸馏水 (ml)小液流移动方向(上、下、不动)0.05 0.5 9.50.10 1.0 9.00.15 1.5 8.50.20 2.0 8.00.25 2.5 7.50.30 3.0 7.00.35 3.5 6.50.40 4.0 6.00.45 4.5 5.5根据以下公式计算出植物组织的水势:公式中: w= iRTC (MPa)w 植物组织水势,单位:Mpa(兆帕) 溶液的渗透势 , 单位:Mpa (兆帕)C 溶液浓度( molL1 )R 气体常数( 0.008314 LMPamol1 K1 )T 绝对温度(273 + t)i 解离系数( CaCl2 =2.60;蔗糖=1)六、注意事项1.配制 CaCl2 溶液浓度要准确,并充分摇匀。2.取样时选材要一致。3.加甲烯蓝要适量,过多会影响溶液浓度,过少则很难识别小液流移动方向。七、思考题1.影响小液流法测定水势准确度的因素有哪些?2.如果在液滴的升降转换过程中没有停滞不动的那一点,应如何处理?

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