沙眼衣原体诊断研究进展【临床医学论文】

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1、临床医学论文-沙眼衣原体诊断研究进展摘要 沙眼衣原体感染在人群中很普遍,但临床上并未引起重视,本文综述了近年来诊断沙眼衣原体感染的进展,着重介绍了分子生物学技术在检测沙眼衣原体中的应用,并提出了诊断沙眼衣原体的新的扩大的金标准。 沙眼衣原体(Chlamydia trachomatis,CT)感染是发展中国家可预防的致盲的最重要的原因,也是西方工业化国家最常见的性病。CT 可引起泌尿生殖道感染,胎儿感染 CT 可致新生儿结膜炎、新生儿和小婴儿肺炎,以及其它并发症如获得性反应性关节炎、Retiers 综合征1。由于 CT 感染临床表现无特异性,所以常易漏诊。近年来在确诊 CT 感染方面进展迅速,本

2、文将其综述如下。 CT 的形态学检查 最初诊断 CT 感染的实验是吉姆萨(Giemsa)染色。这种方法在 CT 被分离出来前 50 年就开始应用,通过证实被感染细胞内 CT 包涵体的存在而判断是否感染 CT。但是由于其敏感性和标本收集上有困难,未能成为一种常规检测方法。此种涂片染色的标本要求必须有大量的(数以千计)上皮细胞,而镜检也较费时,同时也受观测者的主观影响。在诊断男性尿路感染时敏感性较低,其阳性率仅为培养证实 CT 感染的 15%。但是在诊断新生儿 CT 结膜炎时,Giemsa 染色镜检被认为是简便、易行而敏感的一种方法,50%-90%的涂片可见胞浆内包涵体及大量多形核白细胞。也可将刮

3、片标本用甲醇固定,碘染色后镜检,因 CT 包涵体含糖原,遇碘呈棕褐色,即阳性。 CT 的细胞培养 1956 年我国汤非凡教授首次在世界上用鸡胚卵黄囊培养 CT 获得成功。10年后,组织细胞培养 CT 成功。从病人组织中分离 CT,长期以来都被作为一种确诊试验,但是非百分之百敏感,培养失败常由于标本多变或标本收集方法不当而引起。 培养细胞现多常用 McCoy 细胞或 Hela-229 细胞株2,BHK-21 细胞也对 CT易感。最初操作时使用 X 线照射过的 McCoy 细胞,现常用放线菌酮处理过的单细胞层。细胞培养过程中,起决定作用的一步是将接种物离心进入培养的单细胞层内,然后所有细胞在 35

4、孵育 48-72 小时,进行 Giemsa 染色、碘染色或单克隆荧光抗体染色,在光学显微镜下寻找 CT 包涵体。虽然此方法特异性高达100%。因受标本采集、保存、转运和培养等许多因素影响,多数研究显示敏感性仅为 52%-92%3.4。 CT 的抗原检测 一、酶免疫测定(EIA) 此方法是将酶与单克隆抗体用交联剂结合起来,形成酶标抗体,检测标本中有无 CT 抗原。如有 CT 抗原,则与酶标抗体发生特异性反应,加入酶的底物,底物被酶催化生成可溶性或不溶性呈色产物,即为阳性。可用肉眼或分光光度计定性或定量,其敏感性为 93%-98%,10 分钟可出报告。 二、直接荧光抗体试验(DFA) 此方法是利用

5、荧光标记的单克隆抗体检测标本中有无 CT 抗原。其诊断新生儿 CT 结膜炎的敏感性高达 95%-100%,20 分钟可出报告,但需用荧光显微镜观察。Thomas 等5用不同方法测定宫颈拭子标本中的 CT,EIA 可检出稀释至 10-510-6 的原体(elementary body,EB);而DFA 对稀释至 10-8 后的 EB 仍可阳性,敏感性较 EIA 为高。 核酸扩增技术 近年来,随着分子生物学的发展,核酸扩增技术在常规感染的诊断中很快建立。这些技术主要有扩增探针(Ampliprobe)、聚合酶链反应(PCR)、连接酶链反应(LCR)、核酸自身连续序列复制技术(NASBA)和 Q-B

6、复制酶试验。 一、扩增探针法由于非培养检测方法不断发展,DNA 杂交也逐渐被应用于诊断 CT 感染。通常这些实验特异性较高,但并非最敏感。由于需要放射性元素标记的探针而限制了其应用随着分子生物学发展、硫标记的 DNA 探针及生物素标记的 DNA 探针解决了这些问题。近年来采用 DNA 探针直接检测 CT tRNA 及增强化学发光探针实验(PACE)提高了检测的敏感性。扩增探针系统依赖于检测标志的扩增,而不是模板 DNA 本身被扩增。与预期模板互补的 DNA 克隆进入M13 噬菌体载体,分离单链 DNA 在固相支 持物上针对模板 DNA 进行杂交,与M13 噬菌体基因互补的第二个探针包裹载体序列

7、,通过碱性磷酸酶而被检测。Thomas 等5认为 PACE dNA 探针可检出 10-5CT,不如 PCR 敏感(PCR 可检出10-8CT)。扩增探针法检测尿液标本 CT,其敏感性和特异性分别达到 92%和99%6,7。 二、PCR PCR 检测 CT 快速,简便,有高度敏感性和特异性。通过特异引物和 Taq dNA 聚合酶,在一定条件下将标本 CT 靶片段扩增,然后将扩增产物行电泳检测,据凝胶上预计分子量 DNA 扩增带的出现判断结果。整个过程需 45 小时。1987 年,Mullis 和 Faloona 最早应用 DNA 聚合经过高温变性,降温退火,适温延伸三个步骤,反复循环 3040

8、次,可将标本中的 DNA 量扩增1091012。stergaard 等8经过 40 个循环,可检测 10-17g 的 CT dNA,相当于 1 个拷贝的质粒,检测敏感性和特异性分别达到 100%93%。 三、LCR 法1991 年,Barany 从生栖热菌(Thermus aquaticus)中提取耐热 DNA 连接酶并用该酶扩增 DNA 获得成功,正式命名为 LCR。LCR 反应需要两对互补的寡核苷酸探针,在模板 DNA、DNA 连接酶、DNA 聚合酶存在的前提下,通过变性、复性连接的多次循环使靶 DNA 大量扩增。LCR 大大地改善了扩增反应的特异性和敏感性,Stary 等9认为 LCR

9、对各种类型的 CT 标本都有很高的敏感性。文献报道用 LCR 检测尿标本中 CT 的敏感性在 95%以上,特异性有 99%以上10,11,优于 PCR 及 EIA。Nikkari 等12甚至报道在由 CT 引起的关节炎滑液的细胞中,LCR 也检出 CT dNA,而 PCR 不能。标本中抑制物可影响 LCR 的结果,而将标本冻融、稀释可减少抑制物,提高 LCR 的敏感性13。 四、NASBA 法是一个简单、快速扩增核酸的方法,约 2 小时可将 RNA 扩增1010 倍,它是一个持续的恒温过程,不需要特殊的仪器。类似 PCR 之处是利用2 个引物呈指数地扩增位于引物旁的序列,不同之处在于它需要三种

10、酶:T7RNA聚合酶、核糖核酸酶、鸟类成髓细胞性白血病病毒逆转录酶,且反应处于一个恒定的温度。这三个酶产生逆转录和转录过程,导致靶序列自身复制14。NASBA 依靠一个逆转录和转录反应持续反复循环,由互补 DNA 中介复制 RNA 模板,寡核苷酸链引导 DNA 合成,并为 T7RNA 聚合酶编码启动子序列。反应中首先合成双链 cDNA,该 cDNA 作为 T7RNA 聚合酶的转录模板。而完成 cDNA 合成有赖于核糖核酸酶消化分解作为中介物的 RNA-DNA 杂交物中的 RNA。足够转录的cDNA 产生原始模板的反义 RNA,转录产物转化成为含有双链启动分子的 cDNA。这些 cDNA 能产生

11、有义 RNA 和反义 RNA,二者都能重新进入循环。NASBA 扩增的效率仅轻微受初始 RNA 浓度影响,扩增产物的积累量与时间呈指数相关,反应在恒温 37下进行,迅速,12 小时孵育后,反应产物可扩增 107 倍。扩增产物达到 105 倍仅需 15 分钟而 PCR 需 85 分钟15。Morre 等16认为 NASBA 在检测尿标本 CT 感染和宫颈标本有同样的敏感性,且对 16S rNA 最敏感,只需10-5 包涵体形成单位(IFU)即可检出,比 PCR 敏感 10 倍。 五、Q- 复制酶试验 Q- 复制酶催化一条被称为 MDV-1 的 218 个碱基的RNA 模板自身复制,12 分钟内复

12、制酶可扩增 MDV-1 模板 106 拷贝,该实验的基础是三明治杂交、可逆性靶捕获和 Q- 复制酶扩增。反应在恒温下进行,4 小时内完成。检测 CT 核糖体 RNA 和核糖体 DNA。使用 2 种类型的探针:一是特异性捕获探针,另一是可复制的 DNA 检测分子17。由于该技术基于 RNA 的扩增,而微生物体内含有大量 RNA 拷贝,故能达很高的敏感性,可用于检测活动性感染,且 Q- 复制酶试验受标本中抑制物的影响比较小18。An 等19认为 Q- 复制酶可检测 5 个 CT eB,且不受标本中抑制物的影响。 自从细胞培育 CT 成功以来,就一直作为诊断 CT 感染的金标准,但即使是在有经验的实

13、验室,细胞培养敏感性仍然只有 75%90%。这降低了它在检测低流行人群中 CT 感染的使用价值。近年来核酸扩增方法在感染性疾病诊断中的广泛应用,LCR 具有高度敏感性和特异性,在 CT 的诊断方法中的地位日趋重要,故 Lee20提出了诊断 CT 感染的扩大的金标准,即(1)细胞培养 阳性;(2)细胞培养阴性,但 LCR 阳性且 DFA 证实。而其它核酸扩增技术,尚需进一步研究,但是非培养方法是今后 CT 诊断发展的趋势。 参考文献 Cates W, Wasserhert JN, Chen YN, et al. Am J Obstet gynecol,1991;164(10) :17711781

14、 Blanding J, Grayston IJ, Kuo CC, et al. J Clin Microbiol,1993;31(6):16221625 Bssiri M, Hu HY, Thomas BJ, et al. J Clin Microbiol,1995;33(4):898900 Schachter J, Stamn WE, Baraay F, et al. J Clin Microbiol,1994;32(10):25402543 Thomas BJ, Maclevd EJ, Grayston F, et al. J Clin Microbiol,1995;33(4):9129

15、14 Pasternach R, Vuorinen P, Stary A, et al. J Clin Microbiol,1997;35(3):676678 Mouton J, Verkooyen R, Liu J, et al. J Clin Microbiol,1997;35(8):13691372 stergaard L, Birkeland S, Madevd EJ, et al. J Clin Microbiol,1990;28(7):12541259 Stary A, Najin B, Lee HH, et al. J Clin Microbiol,1997;35(4):8368

16、38 Rumpoanesi F, Donati M, Luo CC, et al. Sex Trans Dis,1996;33(5/6):177180 Stary A, Tomazic-Allen S, Birkeland F, et al. Sex Trans Dis,1996;33(2):97102 Nikkari S, Puolakkainen M, Kacian DL, et al.B r J Rheumatol,1997;36(7):736765 Berg ES, Anestad G, Kramer FP, et al. Eur J Clin Microbiol Infect Dis,1997;16 (10):727731 Compton J.Nature,1991;350(2):9192 Guatell JC, Whitfield KM, Stefano J

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