实验动物学实验报告(共9篇)

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1、为了适应公司新战略的发展,保障停车场安保新项目的正常、顺利开展,特制定安保从业人员的业务技能及个人素质的培训计划实验动物学实验报告(共9篇)实验一大、小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作,掌握大、小鼠的一般操作方法,包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。二、实验动物:昆明小鼠4只、大鼠4只、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。三、实验步骤1、抓取和固定抓取:左手抓小鼠的尾根部固定:左手抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面。同样操作将大鼠抓取和

2、固定2、性别鉴定:抓取和固定小鼠观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。雄性:距离长,毛发密;雌性:距离短,毛发稀疏。同样鉴别方法,重复鉴别大鼠。3.给药灌胃法按正确方法用左手抓取和固定小鼠,使腹部朝上,颈部拉直。固定后,右手持持接灌胃针的注射器吸取药液,将针头从口角插入口腔内,然后用灌胃针头压其头部,使口腔与食管成一直线,再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入,转动针头刺激动物吞咽,然后沿咽后壁慢慢插入食道。当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内,向外抽动注射器活塞,感觉有负压,此时可将药液灌入。用大鼠重复同样操作注射给药皮下注射用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤,右手持注射器,使针头水平刺

3、入皮下,针头能自由拨动无牵阻,推送药液时注射部位隆起。拨针时,以手指捏住针刺部位用大鼠重复同样操作腹腔注射以左手固定小鼠,使腹部向上,右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下,针头稍向前,再将注射器沿45角斜向穿过腹肌进入腹腔,此时有落空感,回抽无回血或尿液,即可注入药液。用大鼠重复同样操作尾静脉注射先将动物固定在暴露尾部的固定器内,用75酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张,以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,用中指从下面托起鼠,右手持注射器,使针头尽量采取与尾部平行的角度进针,从尾末端处刺入。注入药液,无阻力,表示针头已进入静脉,注射后把尾部向注射侧弯曲,或拔针后随即以干棉球按住注射部位以止血。用大鼠重复

4、同样操作4取血内眦取血:左手固定小鼠,食指和拇指轻轻压迫颈部两侧,使眶后动静脉充血。右手持毛细采血管,以45度从内眼刺入,并向下旋转,感觉刺入血管后,再向外边退边吸,使血液顺承血管自由流入小管中,当得到血量后,放松加于颈部的压力,并拔出采血器,以防穿刺孔出血用大鼠重复同样操作五、实验讨论1、小鼠抓取的感受:小鼠性情较温顺,一般不会咬人,比较容易抓取固定。大鼠抓取方法基本同小鼠,抓大鼠时若操作者不熟练,或者大鼠特别凶猛,操作者最好戴上防护手套(帆布或硬皮质均可)。如若是灌胃、腹腔注射、肌肉和皮下注射时,可采用与小鼠相同的手法2、小鼠尾静脉注射感受:尾静脉注射时,可用4550度的温水浸润半分钟或用

5、酒精擦拭,可使血管扩张,同时也可软化表皮角质。如反复注入,应尽可能从尾末端开始,以后向尾根部方向移动注射先远后尽,不要一开始就从尾根部,失败了无法选取注射部位;再次,进血管后注意保持稳定,针尖很容易刺穿血管的。尾静脉就在尾巴的正左右两边,先用酒精用力擦,可以去掉部分角质,然后按住近心端让充血,就很容易看到了。3.灌胃针头插入食道过程中,若动物挣扎厉害,应退出后灌胃针,待动物安静后重新插入。切不可强行插入,以免损伤食道或误入气管导致动物死亡。当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内,向外抽动注射器活塞,感觉有负压说明灌胃针未插入气管,此时可将药液灌入。实验动物学实验报告一、实验动物:小鼠二、操作流

6、程:抓取,固定,编号,给药,取血,麻醉,绝育,解剖。三、具体操作1、抓取:抓取小鼠时,右手抓住小鼠尾巴,不要过于用力,以免惊吓小鼠。左手从小鼠身体后部向前抓,抓住小鼠颈部。固定住小鼠后,将小鼠皮肤往上抓,尽量将小鼠背部皮肤抓住。左手将小鼠腹部朝向自己,把小鼠尾巴用左手无名指和小指夹住,这时小鼠腹部皮肤紧绷,不能动弹。2、固定:通常使用固定器进行固定。将固定器拧开后,抓住小鼠尾巴,使其钻入固定器中,再将拧下的固定器部分装好,使小鼠尾部露出,再将可旋转的铁片固定住即可进行后续实验。3、编号:编号方式有两种:剪脚趾编号:把小鼠腹面朝上,在下的脚趾从左至右依次编为110号,剪10号脚趾加19号脚趾依次

7、编为1119号,在上的脚趾依次编为20,30,40,50,60,70,80,90号,其余编号与1119号类似。打耳钉编号:耳钉上均有唯一编号,通过使用耳钉钳将耳钉打在小鼠耳朵上即可。实验时通常使用的是第一种方式进行编号,第二种编号通常用于需要长距离运输的动物。4、给药:常用的给药方式有:口服给药:即灌胃。将注射器装入药物溶液,装上灌胃针。如上所述,抓取小鼠后,使其头部朝上,尽量呈一直线,取灌胃针,从小鼠嘴角一侧缓缓插入,顺着小鼠口腔食道的弧度让小鼠将针咽入,灌胃过程中如果遇到阻碍一定要及时拔出灌胃针,不可强行灌胃以免伤及小鼠食道以及肺部。灌胃针顺利进入后基本与小鼠身体呈一条直线,注入适量体积后

8、再顺着食道缓缓取出灌胃针。静脉注射:小鼠尾部有3条静脉和1条动脉,3条静脉非别位于背部,及两侧。静脉注射时一般选取两侧静脉,因为其相对于背部静脉更为清晰饱满。将小鼠固定后,用酒精擦拭其尾部静脉,使其充血,以便注射。之后使注射器针孔处朝上,针与尾部呈约30扎入尾部后向上轻挑,再向内扎入部分,此过程应该比较顺畅,没有阻碍,若阻碍较大则有可能扎入到了皮肤中。扎入后将活塞向后回抽一点可见到有血回流,则说明成功扎入静脉当中,注射适当体积后迅速拔针,用酒精进行消毒。5、取血:有断尾取血法和眼眶取血法两种。本次实验使用的是眼眶取血法。抓取小鼠,固定其头部用手指将其上下眼睑分开,露出其眼球并且不能闭上。用玻璃

9、毛细管从其上眼角处扎入眼球后方毛细血管从,使血液顺着毛细管留下,取血完成后快速将毛细管取下。6、麻醉:抓取老鼠,使其头部朝下,使其腹部脏器向胸腔靠拢,露出腹部空腔,以免刺伤脏器。将注射器竖直扎入靠近后腿部腹腔,刺入之后稍微向前倾斜但不要向前刺入,一般注入麻醉剂即可。随后拔出针,方向小鼠,等待几分钟后即可麻醉。7、绝育:绝育手术是通过剪除雌鼠卵巢或雄鼠输精管来实现的。将麻醉的雌鼠背面朝上,从其胸腔和尾部之间向下三分之一处剪开一个小口,用镊子将其卵巢取出,上面呈现红色斑点的部分即为卵巢,用剪刀将这一部分剪除,然后用缝合针线将其缝合,缝合方法为将针穿过后,将线缠绕镊子两圈再逆时针缠绕两圈,再重复缠绕

10、一遍,将镊子夹住线头把缠绕的线移至线头系紧即可,里面肌肉层以及外面皮层均需缝合。雄鼠则从外生殖器向上1-2cm处剪开小口,用镊子在其中找出输精管,尽量多减掉一些,以免其长长愈合,以上述方法缝合伤口即可。9、解剖:以颈椎脱臼法处死小鼠,使其腹面朝上。用镊子将其腹部皮肤夹起,然后用剪刀剪开,观察各个器官所在位置和形态,解剖完的小鼠放入尸体袋中。复旦大学实验动物学实验报告实验报告一小鼠的一般技术操作一、实验目的和要求:通过实际操作,掌握小鼠实验的一般操作方法,包括动物的抓取和保定、性别鉴定、编号、给药、麻醉、采血、处死、解剖等方法。二、实验基本步骤:抓取和保定先用右手将小鼠的尾巴提起,至于鼠笼或粗糙

11、的平面上,当小鼠向前挣扎行进时,再用左手的拇指和示指捏住小鼠两耳后颈部皮肤,翻转小鼠至于掌心,拉直后肢。以小指拉住小鼠尾巴即可。在一些特殊的实验中,如进行尾静脉注射时,可使用专门的小鼠固定器进行保定。性别鉴定将小鼠抓取后,观察其肛门及生殖器之间的距离,距离远的为雄性,距离近的为雌性。另外翻转小鼠观察生殖器附近,性成熟的雄性小鼠的睾丸降至阴囊内,会有明显的突起;雌性小鼠的肛门至会阴处有一条无毛覆盖的细线。编号方法常用的有染色法、耳缘打孔法、烙印法、挂牌法。此外还有断趾法、剪尾法、被毛剪号法、笼子编号法等。在本次实验中,我们小组使用的是染色法。去毛方法常用的有拔毛法、剪毛法、剃毛法、脱毛法。给药方

12、法常用的有经口灌胃法、经呼吸道吸入、经皮肤吸收和注射给药法。1经口给药法灌胃法:左手固定小鼠,右手持灌胃器,将灌胃针从小鼠的一侧犬齿缺失处插入口中,灌胃针竖起靠向口腔后壁,使小鼠消化道成直线,沿咽喉壁缓慢插入食管,使其前段到达膈肌位置,灌胃针插入时应无阻力,如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出,以免损伤、穿破食管或误入气管。口服法在本次实验中,我们小组使用的是灌胃法。2.注射给药法皮下注射肌肉注射腹腔注射静脉注射在本次实验中,我们使用的是皮下注射、腹腔注射、静脉注射。采血方法1.断头取血2.眼眶后静脉丛穿刺采血3.尾静脉切割采血法4.摘眼球采血法5.心脏采血在本次实验中,我们小组使用的是眼眶后

13、静脉丛穿刺采血、尾静脉切割采血、摘眼球采血法、心脏采血。麻醉方法1.常用局部麻醉剂:普鲁卡因、利多卡因2.常用全身麻醉剂:乙醚、苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠、巴比妥钠、氨基甲酸乙酯。在本次实验中,对小鼠采用腹腔注射麻醉,方法与腹腔注射给药一样,麻醉剂是2%水合氯醛,剂量为400mg/kg,注射量为/25g。皮肤移植在本次实验中,在小鼠尾巴上切取长8mm,宽3mm的皮肤,切取效果不好。处死方法1.颈椎脱臼法2.断头法3.击打法4.急性大出血法5.药物致死法在本次实验中,我们小组采用的是颈椎脱臼法。解剖方法解剖步骤如下:动物尸体取仰卧位,将四肢固定,用水浸湿被毛。从下颌中央开始到耻骨联合正中垂

14、直切口,用骨剪把左右肋骨剪断后,将胸骨向前下方翻开,即可暴露胸、腹腔。按胸腔、腹腔、颅腔的次序观察各脏器的位置、形状及彼此相互关系,然后分别取下。先在胸腔入口处切断食管和气管,将心和肺一起取出;再依次摘除腹部脏器脾、肝、肾上腺、肾、胃、肠和盆腔器官,分别进行各脏器的检查。在本次实验中,我们小组解剖了一只雄性小鼠和一只雌性小鼠。在观察各个脏器之后,着重又观察了胸腺、胰腺、肾上腺、雌性小鼠的子宫、卵巢、雄性小鼠的睾丸、凝固腺。实验报告二兔的一般操作技术一、目的和要求通过实际操作,基本掌握兔的抓取和保定、性别鉴定、灌胃、耳缘静脉采血注射、解剖、处死等操作技术。二、实验基本步骤:抓取和保定1.抓取:轻轻打开笼门,勿使兔受惊,当兔安静下来时,用手伸入笼内,从头前部阻。它跑动,用右手把两耳轻轻压于手心内,抓住颈背部皮肤提起兔,然后用左手托住臀部,兔身的重量大部分落在左手掌上。2.保定:将兔置于实验台上,待兔安静后。双手各抓一侧兔前肢,肘部夹住兔后肢后向胸腹部靠拢,展开兔前肢,暴露兔雄部。性别鉴定使兔下腹部朝向观察者,将生殖器周围的皮肤拨开,可见一圆孔,里面暴露出阴茎,则为雄性,反之为雌性。给药方法1.灌胃2.耳缘静脉注射在本次实验中,我们小组采用的是灌胃给药法,由于没有固定器医学实验动物学实验报告实

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