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1、质粒DNA的提取、定量 酶切鉴定,http:/ 生物化学与分子生物学实验教学中心 Expertimental Teaching Center of Biochemistry and Molecular Biology,实验内容,提取原理 操作步骤,计算方法 操作步骤,质粒DNA,定量,酶切原理 酶切步骤,酶切,电泳原理 电泳步骤,电泳,2. 质粒DNA提取原理 3. 质粒DNA操作步骤 4. 紫外检测定量知识 5. 酶切原理、操作步骤 6. 琼脂糖电泳原理及步骤 7. 凝胶成像系统,质粒DNA的提取,酶切分析,质粒定量,琼脂糖凝胶电泳,实验流程,实验目的,掌握碱裂解法提取质粒的方法 了解紫外吸
2、收法检测DNA浓度与纯度的原理、方法 学习水平式琼脂糖凝胶电泳操作,第二部分 质粒DNA提取与定量Extraction and Quantitation of Plasmid DNA,独立于细菌染色替外，能独立自主复制的闭合环状DNA分子；存在于细菌，放线菌，真菌以及一些动植物细胞中，在细菌细胞中最多,质粒（lasmid）,定 义,碱裂解法 煮沸裂解 羟基磷灰石柱层析法 质粒DNA释放法 酸酚法等,方 法,选择哪一种方法主要取决以下几个因素：质粒的大小 大肠杆菌菌株 裂解后用于纯化的技术和实验要求,分离质粒DNA的方法包括3个基本步骤： 培养细菌使质粒扩增； 收集和裂解细菌； 分离质粒DNA,
3、分离质粒DNA三步曲,分离 质粒,收集 裂解 细菌,质粒 扩增,基本步骤,基本原理,1、碱裂解法,基于染色体DNA与质粒DNA的变性与复性的差异；,高碱性条件下，染色体DNA和质粒DNA变性；,当以高盐缓冲液调节其pH值至中性时，变性的质粒DNA复性并保存在溶液中，染色体DNA不能复性而形成缠连的网状结构，通过离心形成沉定去除；,2、离心层析柱,基本原理,硅基质膜在高盐、低pH值状态下选择性地结合溶液中的质粒DNA；去蛋白液和漂洗液将杂质和其它细菌成分去除；低盐，高pH值的洗脱缓冲液将纯净质粒DNA从硅基质膜上洗脱；,原理示意图,（一）仪器：恒温培养箱、恒温摇床、超净工作台、台式离心机、高压灭
4、菌锅 （二）材料：含pMD18-T质粒的大肠杆菌DH5 （三）试剂： LB培养基（液体、固体） Bioteke质粒提取试剂盒（北京百泰克，中国）,溶液 P1 溶液 P2 溶液 P3 去蛋白液 PE 漂洗液 WB 洗脱液 EB,仪器材料,50mmol/L 葡萄糖 25mmol/L TrisCl(pH8.0) 10 mmol/L EDTA (pH8.0)作用：分散细胞，鳌合金属离子使金属酶失活注意：菌液一定悬浮均匀，不能有结块,溶液 I,0.2 mol/ L NaOH 1% SDS作用：细胞壁肽聚糖在碱性下水解，核酸和蛋白质变性。注意：时间勿太久，动作要温柔，轻轻颠倒几次,溶液 II,5mol/L
5、 乙酸钾 60 ml 冰乙酸 11.5ml 水 28.5ml作用：酸性条件下质粒DNA复性，变性蛋白-SDS线性DNA沉淀，Na可中和DNA注意：复性时间不宜过长,溶液 III,菌液,离心13000rpm,1min,弃上清,瞬时离心,彻底弃上清,加250l 溶液P1,旋涡振荡,悬浮沉淀,加250l 溶液P2,加400l 溶液P3,颠倒数次,放置3-5min,离心13000rpm,10min,取上700l加到吸附柱中,离心,13000rpm,1min,弃滤液，加入500l去蛋白液,13000rpm,1min,离心,（1）,（2）,（3）,（4）,（5）,（6）,（7）,（8）,（9）,弃滤液，加
6、入500l漂洗液WB,（10）,离心,13000rpm,1min,弃滤液，加入500l漂洗液WB,（11）,离心,13000rpm,1min,弃滤液,（12）,空柱离心,13000rpm,2min,放入一个干净的离心管中(开盖放置3min)，在吸附膜的中间加60l洗脱液EB(放置1min),离心,13000rpm,1min,（13）,-20保存备用,操作步骤,颠倒数次,紫外光吸收法,原理：1,物质在光的照射下会产生对光的吸收效应 2,而且物质对光的吸收是具有选择性的3,各种不同的物质都具有其各自的吸收光谱,因此不同波长的单色光通过溶液时其光的能量就会被不同程度的吸收，光能量被吸收的程度和物质的
7、浓度有一定的比例关系.,定量检测,计算方法:因为组成核酸的碱基(G,A,T,C）在260nm处具有强吸收峰，所以通过测定260nm的吸收峰即可对DNA进行定量。,定量检测,记录A260值，通过计算确定DNA浓度，公式如下:质粒DNA(g /ml)=50(A260) 稀释倍数,注意:我们接下来要用的eppendorf公司生产的紫外分光光度计,会根据样品的稀释倍数自动算出质粒DNA的最终浓度和Ratio值.,定量检测,根据在260nm以及在280nm的读数比值估计核酸的纯度（Ratio=A260/A280）,Ratio= 1.8 DNA样品较纯,符合实验要求 Ratio1.9 RNA污染 Rati
8、o1.6 蛋白质或其它杂质的污染,定量检测,实验仪器,定量检测,紫外分光光度计,比色杯,数据处理,定量检测,定量检测,菌体老化 碱裂解不充分 菌体中无质粒 溶液使用不当,请涂布平板培养后，重新挑选新菌落进行液体培养 可减少菌体用量或增加溶液的用量 不要频繁转接，每次接种时应接种单菌落。检查抗生素使用浓度是否正确。 溶液在温度较低时可能出现浑浊，置于37保温片刻直至溶解为清亮的溶液。,问题一：未提出质粒或质粒得率较低，如何解决？,原因,对 策,常见问题,混有蛋白 混有RNA 混有基因组DNA,不要使用过多菌体。重新纯化DNA，去除蛋白、多糖、多酚等杂质 加入RNaseA室温放置一段时间 加入溶液
9、II 和III后防止剧烈振荡，可能把基因组DNA剪切成碎片从而混杂在质粒中。细菌培养时间过长会导致细胞和DNA的降解，培养时间不要超过16小时。,问题二：质粒纯度不高，如何解决？,原因,对 策,常见问题,第三部分 酶切鉴定DNA Restriction Enzyme Digestion,限制性内切酶（restriction endonuclease）是DNA操作过程中所使用的基本工具。 特异性地结合于一段被称为限制酶识别序列的特殊DNA序列之内或其附近的特异位点上，并在此切割双链DNA。 分子克隆中常用的为II类限制酶，其识别位点长度为4、5或6个核苷酸的反向重复序列。,限制性内切酶,限制酶的
10、切割点因酶而异，有的在对称轴处切割, 产生平末端的DNA片段,如HaeIII,有的切割位点在对称轴一侧，产生带有单链突出末端的DNA片段称粘性末端，如EcoR.,限制性内切酶, 平末端 在识别顺序的中心对称轴处切割,5 G-G-C-C 33 C-C-G-G 5,5 G-G3 C-C,-C-C 3-G-G 5,限制性内切酶, 3端粘性末端 在识别顺序的双侧末端切割DNA双链，于对称轴的3末端切割。,5 G-G-T-A-C-C 33 C-C-A-T-G-G 5,G-G-T-A-C 3C,C 3 C-A-T-G-G,限制性内切酶,5 G-A-A-T-T-C 3 3 C-T-T-A-A-G 5,GC-
11、T-T-A-A 5,5 A-A-T-T-C G,5端粘性末端 在识别顺序的双侧末端切割DNA双链，于对称轴的5末端切割。,5 A-A-G-C-T-T 3 3 T-T-C-G-A-A 5,AT-T-C-G-A 5,5 A-G-C-T-T A,限制性内切酶,双酶切限制酶的选择非常重要，尽量选择粘端酶切和那些酶切效率高的限制酶，提前看好各公司的双切酶所用公用的BUFFER 如果有一种buffer能同时使2种酶的活力都超过70%的话，就可以用这种buffer作为反应buffer； 如果两种酶厂家不同无法查时可比较其buffer成份，相似的话可以考虑各取一半中和；,限制性内切酶,Buffer的选择查阅内
12、切酶供应商在目录后的附录中提供的各种酶在不同buffer中的活力表,酶量的选择任何时候2种酶的总量不能超过反应体系的1/10体积，而且最大反应体系最好不要小于20 ul。以TAKARA的为例，其对1单位酶的定义如下：在50 l 反应液中，30温度下反应1小时，将1 g 的DNA完全分解的酶量定义为1个活性单位(U)。 而该酶浓度约为15单位/微升，在除外酶降解的 因素外该酶可分解15g的DNA。,限制性内切酶,插入400bp DNA片段,质粒大小为: 2692bp+400bp=3092bp,酶切片段大小为 ?,酶切位点,酶切位点,影响酶切反应的因素,底物DNA的纯度：主要污染DNA 的某些物质
13、，如酚、氯仿、乙醇等 均能抑制酶反应;反应系统：主要是反应缓冲液中的离子强度,如NaCl和Mg2+, 合适离子强度可以激发酶切反应;反应体积：一般应尽量小，且酶切反应中甘油浓度应低于5%;保温时间与温度：温度改变会使酶识别错误;,限制性内切酶,在一个洁净的1.5mlEP管中按顺序依次加入下述试剂,移液枪轻轻混匀(避免产生气泡),37水浴1h,反应体系,第四部分 琼脂糖凝胶电泳DNA Agarose Gel Electrophoresis,天然琼脂（Agar）是一种多聚糖，主要由琼脂糖（Agarose ，约占80）及琼脂胶（Agaropectin）组成。琼脂糖是由半乳糖及其衍生物构成的中性物质，
14、不带电荷。琼脂胶是一种含硫酸根和羧基的强酸性多糖，由于这些基团带有电荷，在电场作用下能产生较强的电渗现象，加之硫酸根可与某些蛋白质作用而影响电泳速度及分离效果。琼脂糖透明无紫外吸收，因此，目前多用琼脂糖为电泳支持物进行平板电泳。,定 义,琼脂糖是一种天然聚合长链状分子，可以形成具有刚性的滤孔，凝胶孔径的大小决定于琼脂糖的浓度 DNA分子在碱性环境中带负电荷，在外加电场作用下向正极泳动. DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时，有电荷效应与分子筛效应。不同的DNA，分子量大小及构型不同，电泳时的泳动率就不同，从而分出不同的区带(迁移速度与分子量的对数值成反比关系).,实验原理,1、 DNA的分子大小2、
15、 琼脂糖浓度3、 DNA分子的构象 4、 电源电压 5、 嵌入染料的存在 6、 离子强度影响,影响迁移速率因素,分离范围,.电泳指示剂：核酸电泳常用的指示剂有两种，溴酚蓝呈蓝紫色；二甲苯晴呈蓝色，它携带的电荷量比溴酚蓝少，在凝胶中的的迁移率比溴酚蓝慢。 Gelview TBE 琼脂糖 5、 DNA Marker 5000,实验材料,溴化乙锭(EB) :3,8-二氨基-5-乙基-6苯基菲啶溴盐)，可与DNA结合,在紫外光照射下呈现红橙荧光,有致癌性.Gelview: 是一种新型核酸染料,可与DNA分子形成复合物，能产生极强的荧光信号，其灵敏度比EB高, 且荧光强度与DNA含量成正比荧光,在紫外光照射下呈现绿色荧光.,常用染料,实验材料,是分子量不同的DNA片段，主要用途就是DNA 分子凝胶电泳时，加样用做对比来检测琼脂糖凝胶是否有问题。,DNA Marker,应选择在目标片段大小附 近ladder较密的marker，这样对目标片段大小的估计较准确。,实验材料,电泳缓冲液,4 保存备用,实验材料,凝胶准备,胶床准备,铺胶,静置,胶床置于电泳槽中,加电泳缓冲液,拔梳子,上样,电泳,取出凝胶,拍照,实验步骤,
