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1、第二章 基因操作的主要技术原理,核酸的凝胶电泳 扩增原理 分子杂交 测序,核酸的凝胶电泳 它是一种分析鉴定重组DNA分子及蛋白质与核酸相互作用的重要实验手段，同时也是分子生物学研究方法的技术基础。,基本原理 带有负电荷的DNA或RNA核苷酸链，依靠无反应活性的稳定的介质（琼脂糖凝胶和聚丙烯酰胺凝胶）和缓冲液，在电场中以一定的迁移率从负极移向正极。根据核酸分子大小不同、构型或形状的差异，以及所带电荷的不同，可以通过电泳将其混合物中的不同成分彼此分开。,电泳的迁移率取决于核酸分子本身的大小和构型。分子量较小的DNA分子，比分子量较大的DNA分子迁移率要快；同等分子量的不同构型的核酸分子，构型紧密的
2、比松散型的开环DNA分子或线性DNA分子迁移率要快,凝胶电泳的分辨力：与凝胶的类型和密度相关琼脂糖凝胶的分辨力在0.250Kb之间;聚丙烯酰胺的分辨力在11000bp之间,琼脂糖凝胶电泳琼脂糖是一种从红色海藻中提取出的线性多糖聚合物。分为常熔点的琼脂糖和低熔点（LMP）琼脂糖。,LMP琼脂糖熔点：6265 熔解后，在37 可保持液态数小时；在25 可保持液态约10min,回收DNA分子在65 下将LMP琼脂糖凝胶熔化；加入过量的酚抽提DNA；离心获得含DNA分子的上清液； 直接酶切,琼脂糖凝胶电泳的参数：缓冲液：1 TAE（TBE TPE）凝胶的含量：根据检测的DNA大小加DNA样品：1g，指
3、示剂电泳条件：大片断低电压长时间，小片段高电压短时间染色和观察：溴化乙锭（ethidium bromide，EB）染色，在300nm波长的紫外下观察（凝胶成像仪）。能看到0.05 g的微量DNA DNA的片断大小与荧光强度成正比,Separation Range Vs. % Agarose,Low Geling Agarose 4-6 0.02-0.4,用已知分子量的标准DNA对DNA片断大小的估算,Sample Well 25 ng 1 kb ladder 0.8% Agarose,1,2,4,6,8基因工程原理,10,12,kb,Agarose Gel ElectrophoresisEtB
4、r Detection Limit: 5-10 ng DNA,根据标准DNA相对迁移距离推测待测定的DNA片段的大小,Agarose gel electrophoresis,Agarose gel electrophoresis,聚丙烯酰胺凝胶电泳 缓冲液：TBE 凝胶聚丙烯酰胺：丙稀酰胺/ 亚甲双丙稀酰胺（29：1）；TEMED和过硫酸铵（ 10 ）。,PolyAcrylamide Gels,脉冲电场凝胶电泳（PFGE） 1984年，D.R.Cantor发明的。分离超大分子量的DNA分子。 在脉冲电泳中，电场方向是周期变化的，头一个脉冲电场方向与核酸的移动方向成45 角，下一个脉冲的电场方向
5、与核酸移动方向在另一侧成45 角，由于加在琼脂糖凝胶电泳上的电场方向、电流大小、以及作用时间都在交替地变换着，这就使得DNA分子必须随时调整其泳动的方向，来适应凝胶孔隙的无规则变化。 与分子量小的DNA分子相比，分子量大的DNA分子需要较多的次数来更换其构型和方位，使之能够按新的方向游动，所以迁移率就慢，从而达到了分离大分子量DNA分子的目的。,在脉冲电泳中，电场方向是周期变化的，头一个脉冲电场方向与核酸的移动方向成45 角，下一个脉冲的电场方向与核酸移动方向在另一侧成45 角，由于加在琼脂糖凝胶电泳上的电场方向、电流大小、以及作用时间都在交替地变换着，这就使得DNA分子必须随时调整其泳动的方
6、向，来适应凝胶孔隙的无规则变化。 与分子量小的DNA分子相比，分子量大的DNA分子需要较多的次数来更换其构型和方位，使之能够按新的方向游动，所以迁移率就慢，从而达到了分离大分子量DNA分子的目的。 107bp的DNA大分子。,PFGE can resolve large DNA fragments,基因扩增（gene amplification）主要内容：1.体外扩增2.通过体外重组和转化，将目的基因在宿主细胞进行扩增3.在环境作用下，生物体内相关基因的扩增。4.程序基因扩增5.进化过程中的基因扩增,PCR技术在1983年，美国Cetus公司人类遗传研究室的科学家K.B.Mullis发明的。P
7、CR是一种在体外快速扩增特定基因或DNA序列的方法，有称之为体外扩增法。,Reaction Condition for a Typical PCR Assay,Typical PCR Thermal Profile,*This cycle is normally included in a PCR assay in order to allow any “unfinished” product from previous amplification to achieve its full length,Some DNA Polymerases Used in PCR,Characteristi
8、cs of Taq Polymerase,PCR引物：与待扩增的靶DNA区段两端序列互补的人工合成的寡核苷酸片断。1.其长度通常在1530个核苷酸之间。2.简并引物 atggctant3.嵌套引物PCR扩增的长度：2kb,PCR技术的应用：1.基因组克隆突变体的鉴定和在PCR过程中有目的的添加核算序列。,反相PCR(reverse PCR)与染色体步移,不对称PCR(asymmertric PCR)用来制备单链的DNA特点：两种引物的浓度不同，低浓度的限制引物和高浓度引物，两者浓度相差约100倍。获得单链核苷酸的另一种方法是通过固相支持物作DAN链的特意洗脱。（生物素链霉素包裹的磁珠）,RTP
9、CR:在mRNA反转录之后进行的PCR检测RNA分子；获取测序模板DNA；克隆mRNA之cDNA拷贝。,基因的体外诱变,基因组的比较研究：10个碱基作引物用随机引物扩增出的PCR产物，经琼脂糖电泳后所呈现的带型，反映着用作模板的DNA分子的总体结构特征。,核酸分子杂交（DNA/DNA or DNA/RNA）技术核酸分子杂交技术，是在1968年由华盛顿卡内基学院（Cavnegie Institute of Washington）的Roy Britten及其同事发明的。所依据的原理是，带有互补的特定核苷酸序列的单链DNA或RNA，当它们混合在一起时，其相应的同源区段将会退火形成双链的结构。,杂种核
10、酸分子：彼此退火的核酸来自不同的生物有机体，而形成的双链分子。DNA/DNA的杂交作用 检测特定生物有机体之间的亲源关系DND/DNA或RNA/DNA的能力，揭示核酸片断中某种特定基因的位置。,核酸杂交常用几种膜的性能比较,硝酸纤维素膜不能滞留小于150bp的DNA片断，不能同RNA结合。应用1mol/L醋酸铵和0.2mol/L的NaOH缓冲液代替SSC缓冲液可改善对小片断DNA的滞留能力。RNA变性后也能十分容易的结合到膜上。,尼龙膜或硝酸纤维素膜杂交的步骤：1. 核酸印迹转移：将核酸样品转移到固体支持膜上。利用的是毛细管作用2. 印迹杂交： 将具有核酸印迹的滤膜同带有标记的DNA/RNA进
11、行杂交。,1、萨瑟恩DNA印迹杂交根据毛细管作用的原理，使在电泳凝胶中分离的DNA片段转移并结合在适当的滤膜上，然后通过同标记的单链DNA或 RNA探针的杂交作用检测这些被转移的DNA片段，这种实验方法叫做DNA印迹杂交技术。由于它是由E.Southern于1975年首先设计出来的，故又叫Southern DNA 印迹转移技术。,印迹转移前的凝胶处理：分子量不同所需转移的时间不同；浸泡在0.25M的HCL溶液中脱嘌呤，再进行碱变性碱水解，DNA链断裂单链,Southern 凝胶转移杂交技术,Southern DNA 印迹杂交之X光显像图片水稻（Oryza sativa L.)的叶绿体DNA分别
12、用核酸内切限制酶Bgl(A-C)、BamH（D-F）、EcoR（G-I）、和Hind（J-L）消化，加样在含有EtBr染料的1%的琼脂糖凝胶电泳中作电泳分离，然后同32P标记的玉米psbA探针作Southern杂交。X光底片中显现的阳性条带 ，表明含有水稻的psbA基因序列。,在进行核酸印迹转移的时，1. 要将以转好的硝酸纤维素膜在80度下烘烤12小时；2. 紫外线交联法，将DNA分子上的部分胸腺嘧啶残基同尼龙膜表面的带正电荷的氨基基团之间进行交联。,2、诺赛恩RNA印迹技术（Northern blotting）1979年，J.C.Alwine等人发展而来，是将RNA分子从电泳凝胶转移到硝酸纤
13、维素滤膜或其他化学修饰的活性滤纸上，进行核酸杂交的一种实验方法。由于这种方法与萨瑟恩DNA印迹杂交技术十分类似，所以叫做诺赛恩RNA印迹技术（Northern blotting）。而将蛋白质从电泳凝胶中转移到硝酸纤维素滤膜上，然后同放射性同位素125I标记的特定蛋白质之抗体进行反应，这种技术叫做韦斯顿蛋白质杂交技术（Western blotting）。,3、斑点印迹杂交和狭线印迹杂交斑点印迹杂交（dot blotting）和狭线印迹杂交（slot blotting ）是在Southern印迹杂交的基础上发展的量种类式的快速检测特定核酸（DNA和RNA）分子的核酸杂交技术。由于在实验的加样过程中
14、使用了特殊设计的加样装置，使众多待测样品能够一次同步转移到杂交滤膜上，并有规律地排列成点阵或线阵。这两项技术更适应与核酸样品的定量检测。,通过抽真空的方式将加在多孔过滤进样器上的核酸样品，直接转移到适当的杂交滤膜上。,4、菌落杂交也叫原位杂交，是指把菌落或噬菌斑转移到硝酸纤维素膜上，使溶菌的DNA同滤膜原位结合，带有DNA的滤膜烘干后，与放射性同位素标记特异的DNA或RNA探针杂交。鉴定重组子。,检测重组体克隆的菌落杂交技术,蛋白质/DNA、蛋白质/RNA杂交技术,凝胶阻滞实验（Gel retardation assay）又叫DNA迁移率变动实验（DNA mobility shift assa
15、y），是在80年代初期出现的用于在体外研究DNA与蛋白质相互作用的一种特殊的凝胶电泳技术。它具有简单、快捷等优点，也是当前被选作分离纯化特定DNA结合蛋白质的一种典型的实验方法。 原理：DNA与蛋白的结合导致了电泳时迁移率的降低。,不仅可以用来鉴定在特殊类型细胞的提取物中，是否存在与某一特定DNA片断结合的蛋白质分子 而且可以研究发生此中结合之精确的DNA序列的特异性。（加入超量的非标记竞争DNA）,可以间接的阐明体内发生DNA与蛋白质之间的相互作用。1. 用具有已知转录因子结合位点的竞争DNA，可检测蛋白是否属于此类转录因子2. 在竞争DNA的已知转录因子结合位点上，引入突变可评估突变对竞争DNA性能及其转录因子结合的影响。,凝胶阻滞实验能揭示在体内发生的DNA与蛋白质之间的相互作用的有关信息，但无法确定两者结合的准确部位。而DNase足迹实验可以解决这个问题,DNase足迹实验（footprinting assay）是一类用于检测与特定蛋白质结合的DNA序列的部位及特性的专门的实验技术。足迹实验的一个明显优点是，可以形象地展示出一种特殊的蛋白质因子同特定DNA片段之间的结合区域。,32p,1 5 10,*,1 4 8 10,*,加入蛋白质X,加入DNaseI凝胶电泳放射自显影,1,5,10,A B,
