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1、序 号实验项实验项 目名称实实 验验 学 时时实验实验 类类型实验实验 教 师师每 组组 人 数实验时间实验时间1植物组织组织 培养基 母液的配制6验证验证6第3周四3- 5大节节 2植物组织组织 培养基 的配制与灭灭菌6验证验证6第4周四3- 5大节节 3无菌操作及植物愈 伤组织诱导伤组织诱导 、胚 胎培养技术术6验证验证6第5周四3- 5大节节4植物组织组织 、细细胞 培养的研究12设计设计 性6第6-7周四 3-5大节节实验要求1.实验室规则&安全2.不得缺席& 小组长负责制3.人人动脑动手&观测+实验报告4.设计性实验的要求：开放性小组团队协作讨论查阅资料讨论设计 可行性报告定稿实施观
2、测/记录/图片 小论文5.条件&责任每组一套用具今天清点/签名/押金实验结束后交还/退还押金实验论文选登烟草叶片愈伤组织诱导与植株再生摘要: 在植物组织培养中，主要目标是诱导愈伤组织形成和形态发生，使一个 离体的细胞、一块组织或一个器官的细胞，通过脱分化形成愈伤组织，并由愈伤 组织再分化形成植物体。本实验通过烟草叶片外植体体外培养，诱导愈伤组织， 并分化培养产生再生植株。 Abstract：In the plant tissue culture, the main target is to induce the callus forming and morphogenesis, thus ma
3、kes a cell, a tissue or an organ in vitro forming the microspores by dedifferentiation, then a plant by redifferentiation.In this experiment we use the explant cultured in vitro to generate the callus and to be regenerated the plant by differentiation. 关键词:全能性；组织培养；愈伤组织；分化培养；无菌操作1前言： 细胞是生物体的基本结构单位和功
4、能单位。 细胞工程就是利用细胞的全能性， 通过类似于工程学的步骤，在细胞整体水平或细胞器水平上，按照人们的意愿来 改变细胞内的遗传物质以获得新型生物或特种细胞产品的一门综合性科学技术1 。细胞工程所涉及的基本内容,包括细胞培养、细胞融合、细胞核移植、染色体添 加、细胞器转移、胚胎分割、动植物克隆等一系列技术2。 在植物学界，早在1902年德国的植物学家哈泊兰德就预言植物细胞的全能性。 1934年荷兰的植物学家温特发现生长素，并证实了对植物细胞培养的作用。1937 年，在法国巴黎的Gautheret实验室、格勒诺布尔的Nobecourt实验室和普林斯顿的 White实验室等几个实验室几乎同时获得
5、植物培养物的愈伤组织并长期培养成功 3。这是植物细胞与组织的首次成功。 1960年，英国诺丁汉大学科金教授创造性地应用酶解的方法，首次成功地从番 茄幼苗的根部制备到大量的原生质体。在此基础上，1972年美国的卡尔森等人用 NaNO3作为融合诱导剂，将来自不同种的两个烟草原生质体进行融合，获得了世 界上第一个体细胞杂种植株1。 细胞工程技术给医学、农牧业带来巨大的变革。诸如组织培养等生物技术只需 小量投资就可开发，但却能给农民带来实在的利益4。 植物细胞和组织培养的技术性强，要求无菌操作，通过本实验可初步掌握常规 的组织培养技术，加深对无菌操作的了解,掌握植物愈伤组织诱导培养技术和调控 条件，了
6、解器官分化和植株再生的过程。2材料与方法： 材料：烟草无菌苗、烟草叶片愈伤组织 方法： 2.1培养基制备 一般矿质盐浓度较高的基本培养基如MS,B5及改良培养基均可用于诱导愈伤组 织5。 本实验用的是MS培养基，它是1962年由Murashige和Skoog为培养烟草细胞而设 计的。特点是无机盐和离子浓度较高，为较稳定的平衡溶液。其养分的数量和比 例较合适，可满足植物的营养和生理需要。它的硝酸盐含量较其他培养基为高， 广泛地用于植物的器官、花药、细胞和原生质体培养，效果良好。 2.1.1每个组配2000 mL的培养基:向锅中依次加入培养基母液: 大量元素 100mL 微量元素 20 mL 铁盐
7、 20 mL 维生素 20 mL 肌醇 10 mL 甘氨酸 10 mL BA和NAA 各8mL 2.1.2加入1800 mL蒸馏水,加入40g蔗糖后搅拌使其溶化,用0.5N的NaOH和0.5N的 HCl调整PH至5.8-6.0； 2.1.3加入14g琼脂,将锅置于电炉上,搅拌加热使其完全溶化,然后用蒸馏水定容至 终体积2000 mL,继续加热使之混合均匀后分装于三角瓶中，用记号笔写上学号， 姓名和日期；2.1.4分装好的培养基于121C灭菌20min左右，置于无菌室保存备用。 2.2愈伤组织诱导 2.2.1将手洗净，用75%酒精将手消毒，再进入超净工作台开始接种操作； 2.2.2点燃酒精灯,将
8、镊子、解剖刀在酒精灯下烤干； 2.2.3取一无菌培养皿,然后用解剖刀切取1-2片无菌苗叶片置于无菌培养皿中,并 用锋利解剖刀将叶片切成2mm2左右的小片；太小产生愈伤组织的能力弱，太大 在培养基上的地方太大，所以大小应以适当为妥6。 2.2.4取一烟草叶片无菌培养瓶,打开烧瓶口； 2.2.5将切好的小叶片接种于培养瓶中,每瓶接5片； 2.2.6快速封好瓶口,用记号笔写上姓名和接种日期； 2.2.7接种后的三角瓶置于24C条件下，三瓶光培，三瓶暗培。 注意：外植体切割时，动作要快，减少失水。 2.3分化培养与植株再生 2.3.1组织诱导结果：统计诱导率；观察记载黑暗和光照条件下愈伤组织的差异 ，
9、结合理论学习进行分析； 2.3.2将诱导产生的愈伤组织一一对应接入相同的培养基上，标明取自光/暗材料 ； 2.3.3置于20-22C,光照条件下培养； 2.3.4培养一段时间后观察、统计结果。3结果与分析 3.1愈伤组织诱导 3.1.1愈伤组织诱导情况 总共接入外植体30个,实际形成了21个愈伤组织,光照培养的有11个,黑暗培养的 有10个。 愈伤组织诱导率（%）=实际形成愈伤组织数/接种外植体数烟草叶片愈伤组织诱导情况统计表编编 号每瓶 接种 数培养条 件(暗、 光)愈伤组织伤组织 诱导诱导率(%)愈伤组织伤组织 状态态污污染 率 (%)1 5 光 801 个有绿绿豆大，其余3 个稍小；圆圆
10、形突起 嫩绿绿色，略有透亮光泽泽02 5 光 100 5个大小较较均一，绿绿豆大；黄绿绿色；质质地紧紧密 03 5 光 40 2个圆圆形突起近于绿绿豆大小；黄绿绿色，质质地紧紧密 04 5 暗 40 2个有绿绿豆大小；淡黄色；结结构不均匀；有光泽泽 05 5 暗 80 2 个比绿绿豆略大，另2 个稍小；淡黄色，质质地紧紧密 06 5 暗 80 4 个都比绿绿豆稍大；淡黄色偏白；有1个突起上有暗黄色小斑 03.1.2 结果分析 很多研究已证明,用于诱导形成器官的植物材料本身的生理状态,包括培养材料 的组织类型及其相互的位置关系,器官、组织和细胞的生理或个体发育年龄等，以 及在用愈伤组织进行实验时
11、，诱导愈伤组织形成的条件，愈伤组织的年龄以及继 代培养的代数和时间，均对培养中器官或胚状体形成有着明显的影响7。 植物全能性的发挥，除细胞本身的内在原因之外，培养时的光、温度及植物激 素的应用也是十分重要的因素。其中，植物激素的调节起着十分决定性的作用。 科学家们用烟草作试验发现，当细胞分裂素和生长素配合使用时，细胞分裂素的 比例高，生长素的比例低，则细胞就产生芽；反过来，生长素的比例高就会生根 。通过植物激素对培养材料的调节，使我们能更好地控制植物器官的分化方向8 。 本次愈伤组织诱导全部没有污染,但诱导率较低,总结原因可能有以下几个方面: (1)接入时,切取的外植体小片太小,难以发生细胞分
12、裂9； (2)取材时切取的某些部位的叶片过于老化,很难诱导产生愈伤组织，而靠近胚 柄部位的胚性才比较高； (3)可能接入前，镊子在酒精灯上烧过之后未等冷却就接触了叶片,致使叶片烧 伤受损； (4)可能培养基营养供应不足,致使某些愈伤组织因营养缺乏而死亡；(5)其他因素如光照、温度、湿度、激素等方面可能没多大问题，因为同一组的 其他成员诱导的愈伤组织的诱导率都普遍较高。 比较光照和黑暗两处培养的愈伤组织的差别，主要体现在颜色上，光照条件下 的愈伤组织颜色偏绿，而黑暗处组织没有光照，无法合成叶绿素，因而呈现淡黄 色。3.2分化培养与植株再生3.2.1分化情况 取自光下的愈伤组织经分化培养后，三瓶都
13、没有分化；暗处的愈伤组织分化培 养后，只有一瓶里面有分化芽，该瓶原来接入2个愈伤组织，2个都分化了。 分化率（%）=能够分化芽的愈伤组织/接种愈伤组织数100烟草叶片愈伤组织再生植株情况统计表编编 号愈伤组织伤组织 来 源（光/暗）分化率 (%)每个愈伤伤 组织组织 分化 芽数分化芽状态态污污染率 (%)1 光 0 0 无分化芽 02 光 0 0 无分化芽 03 光 0 0 无分化芽 04 暗 100 33 愈伤组织长伤组织长 大并分化,有樱樱桃大小,绿绿色 ,呈现现不规则组织块规则组织块 状,每个表面都有很 多球形突起,表面有很多深绿绿色的小点即 分化芽05 暗 0 0 无分化芽 06 暗
14、0 0 无分化芽 03.2.2结果分析 根据愈伤产生的速度和形成愈伤的类型,可以初步判断愈伤的质量,即产生再生 植株的可能性。较好的愈伤组织多呈淡黄(绿)色或无色，疏密程度适中。过于紧 实或过于疏松的愈伤都很难再诱导分化产生植株。愈伤组织结构应该是不均匀者 为好，就是说在整团愈伤组织中应有一些颗粒状或成簇的小细胞团，这些小细胞 团往往是分化产生植株的核心，有的称其为芽点或原始胚状体。一开始紧密坚实 ，呈现浓厚的绿色，质量不好，很难再分化出再生植株3。 本实验失败的原因可能与上个步骤诱导产生的愈伤组织的质量有很大关系，产 生的愈伤组织质地都相当紧密，结构也较均匀，不见一些颗粒状的小细胞团；另 外
15、可能存在一些激素、营养供应等方面的原因使愈伤组织难以分化。还有很可能 就是镊子取材时未冷却将组织烧伤，细胞已死亡。4小结 当植物的器官组织与完整植株分离之后,如果供给合适的营养和生长 调节物质,它们在离体条件下由于受到伤害的刺激及生长调节物质的 诱导,可恢复细胞分裂和生长分化的能力。因此植物的离体组织、器 官、细胞或原生质体在无菌和适宜的人工培养条件下培养，能够产 生愈伤组织，并长成植物体10。植物组织培养的成功与否取决于外植体的制备、无菌操作和人工培养环境。 外植体的制备是能否建成离体繁殖系要过的第一关。制备外植体的原则是无菌 和有活性，无菌是外植体植被的要求，有杂菌带入培养基会造成微生物污
16、染，而 阻滞甚至杀死外植体。有活性是外植体制备的前提，无活性的外植体的培养在植 物组织培养中是无意义的。 无菌操作是贯穿于整个组织培养过程的一门关键技术，甚至可以说组织培养的 前提就是无菌。实验室中经常使用的无菌操作设备是超净工作台。无菌操作者的 操作手法和习惯也是无菌操作成功与否的关键，通常进行无菌操作的实验人员也 要经过严密的无菌操作训练并建立严格的“无菌概念”。 能否把植物组织培养做到满意的人工调控，关键在于人工培养环境。所有的多 细胞植物都有诱发愈伤组织的可能，诱发成功的关键并不在于植物材料的来源， 而在于培养条件7。 培养环境是整个组织培养的难点和重点，也是近百年来植物生理学家一直探讨 和研究的重要话题。人工培养环境包括能量的来源光照，新陈代谢的保证 温度，气水平衡湿度，生物原料的来源培养基。这与植物的自然环 境是类似的，即光照、温湿度和土壤。 SKoog和Miller的“激素平衡“概念已成
