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1、人抗甲型肝炎病毒 IgG抗体（anti-HAV）酶联免疫分析试剂盒使用说明书本试剂盒仅供体外研究使用!预期应用ELISA法定量测定人血清、血浆或其它相关生物液体中 anti-HAVIgG 含量。实验原理用纯化的抗体包被微孔板，制成固相载体，往包被抗anti-HAV IgG抗体的微孔中依次加入标本或标准品、生物素化的抗 anti-HAVIgG抗体、HRP 标记的亲和素，经过彻底洗涤后用底物 TMB显色。TMB 在过氧化物酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的 anti-HAV IgG呈正相关。用酶标仪在 450nm 波长下测定吸光度（OD值），计算样品浓度。试
2、剂盒组成及试剂配制1. 酶联板：一块（96 孔）2. 标准品（冻干品）： 2 瓶，每瓶临用前以样品稀释液稀释至 1ml，盖好后静置 10 分钟以上，然后反复颠倒/搓动以助溶解，其浓度为10 ng/ml，做系列倍比稀释（注：不要直接在板中进行倍比稀释）后，分别稀释成 10 ng/ml，5 ng/ml，2.5ng/ml，1.25 ng/ml，0.625 ng/ml，0.312 ng/ml，0.156 ng/ml，样品稀释液直接作为标准浓度0 ng/ml， 临用前15 分钟内配制。 如配制5 ng/ml 标准品： 取0.5ml（不要少于0.5ml）10 ng/ml的上述标准品加入含有0.5ml 样品
3、稀释液的 Eppendorf管中，混匀即可，其余浓度以此类推。3. 样品稀释液：120ml。4. 检测稀释液A：110ml。5. 检测稀释液B：110ml。6. 检测溶液A：1120l（1:100）临用前以检测稀释液A 1:100 稀释，稀释前根据预先计算好的每次实验所需的总量配制（100l/孔），实际配制时应多配制 0.1-0.2ml。如10l 检测溶液 A 加 990l 检测稀释液A 的比例配制，轻轻混匀，在使用前一小时内配制。7. 检测溶液B：1120l/瓶（1:100）临用前以检测稀释液 B 1:100 稀释。稀释方法同检测溶液 A。8. 底物溶液：110ml/瓶。9. 浓洗涤液：13
4、0ml/瓶，使用时每瓶用蒸馏水稀释25 倍。10. 终止液：110ml/瓶（2N H2SO4）。11. 覆膜：5 张12. 使用说明书：1 份自备物品1.酶标仪（建议参考仪器使用说明提前预热）2.微量加液器及吸头，EP 管3.蒸馏水或去离子水，全新滤纸标本的采集及保存1. 血清：全血标本请于室温放置2 小时或4过夜后于1000 x g 离心20 分钟，取上清即可检测，或将标本放于-20或-80保存，但应避免反复冻融。2. 血浆：可用EDTA 或肝素作为抗凝剂，标本采集后30 分钟内于2 - 8 C 1000 x g 离心 15 分钟，或将标本放于-20或-80保存，但应避免反复冻融。3. 其它
5、生物标本：请1000 x g离心 20 分钟，取上清即可检测，或将标本放于-20或-80保存，但应避免反复冻融。4. 样本处理：血清或血浆标本推荐稀释10 倍，如：稀释10 倍，取100uL 血清或血浆加入900uL 样品稀释液。标本使用 0.1M 的 PBS 稀释（PH=7.0-7.2）。注：以上标本置 4保存应小于 1周，-20或-80均应密封保存，-20不应超过 1个月，-80不应超过2个月；标本溶血会影响最后检测结果，因此溶血标本不宜进行此项检测。操作步骤实验开始前，各试剂均应平衡至室温（试剂不能直接在 37溶解）；试 剂或样品稀释时，均需混匀，混匀时尽量避免起泡。实验前应预测样品含量
6、，如样品浓度过高时，应对样品进行稀释，以使稀释后的样品符合试剂盒的检测范围，计算时再乘以相应的稀释倍数。1. 加样：分别设空白孔、标准孔、待测样品孔。空白孔加样品稀释液 100l，余孔分别加标准品或待测样品 100l，注意不要有气泡，加样将样品加于酶标板孔底部，尽量不触及孔壁，轻轻晃动混匀，酶标板加上盖或覆膜，37反应120 分钟。为保证实验结果有效性，每次实验请使用新的标准品溶液。2. 弃去液体，甩干，不用洗涤。每孔加 检测溶液 A 工作液 100l（在使用前一小时内配制），酶标板加上覆膜, 37反应60 分钟。3. 温育60 分钟后，弃去孔内液体，甩干，洗板 3次，每次浸泡 1-2 分钟，
7、大约400l/每孔，甩干（也可轻拍将孔内液体拍干）。4. 每孔加检测溶液B 工作液（同检测A 工作液） 100l，酶标板加上覆膜37反应 60 分钟。5. 温育60 分钟后，弃去孔内液体，甩干，洗板 5 次，每次浸泡1-2 分钟，350l/每孔，甩干（也可轻拍将孔内液体拍干）。6. 依序每孔加底物溶液90l，酶标板加上覆膜37避光显色（30 分钟内，此时肉眼可见标准品的前3-4 孔有明显的梯度兰色，后 3-4孔梯度不明显，即可终止）。7. 依序每孔加终止溶液50l，终止反应，此时蓝色立转黄色。终止液的加入顺序应尽量与底物液的加入顺序相同。为了保证实验结果的准确性，底物反应时间到后应尽快加入终止
8、液。8. 用酶联仪在450nm 波长依序测量各孔的光密度（OD值）。 在加终止液后立即进行检测。注：1. 试剂准备：所有试剂都必须在使用前达到室温，使用后请立即按照说明书要求保存试剂。 实验操作中请使用一次性的吸头，避免交叉污染。2.加样：加样或加试剂时，请注意在吸取标本/标准品，酶结合物或底物时，第一个孔与最后一个孔加样之间的时间间隔如果太大， 将会导致不同的 “预孵育”时间， 从而明显地影响到测量值的准确性及重复性 。一次加样时间（包括标准品及所有样品）最好控制在 10 分钟内，如标本数量多，推荐使用多道移液器加样。3.孵育：为防止样品蒸发，试验时将反应板放于铺有湿布的密闭盒内，酶标板加上
9、盖或覆膜，以避免液体蒸发；洗板后应尽快进行下步操作，任何时侯都应避免酶标板处于干燥状态;同时应严格遵守给定的孵育时间和温度。4.洗涤：洗涤过程中反应孔中残留的洗涤液应在滤纸上充分拍干，勿将滤纸直接放入反应孔中吸水，同时要消除板底残留的液体和手指印，避免影响最后的酶 标仪读数。5. 试剂配制：Detection A 及 Detection B 在使用前请手甩几下或少时离心处理，以使管壁或瓶盖的液体沉积到管底。标准品、检测溶液A 工作液、检测溶液 B 工作液请依据所需的量配置使用，并使用相应的稀释液配制，不能混淆。请精确配置标准品及工作液，尽量不要微量配置（如吸取检测溶液A 时，一次不要小于 10
10、l），以避免由于不准确稀释而造成的浓度误差；请勿重复使用已稀释过的标准品、检测溶液A 工作液或检测溶液 B 工作液。6. 反应时间的控制：加入底物后请定时观察反应孔的颜色变化（比如，每隔10 分钟），如颜色较深，请提前加入终止液终止反应，避免反应过强从而影响酶标仪光密度读数。7. 底物：底物请避光保存，在储存和温育时避免强光直接照射。建议检测样品时均设双孔测定，以保证检测结果的准确性。如标本中待测物质含量过高，请先稀释后再测定，计算时请最后乘以稀释倍数。洗板方法1. 手工洗板方法：吸去（不可触及板壁）或甩掉酶标板内的液体；在实验台上铺垫几层吸水纸，酶标板朝下用力拍几次；将推荐的洗涤缓冲液至少
11、0.3ml 注入孔内，浸泡1-2 分钟，根据需要，重复此过程数次。2. 自动洗板：如果有自动洗板机，应在熟练使用后再用到正式实验过程中。特异性本试剂盒可同时检测重组或天然的人 anti-HAVIgG，且与其它相关蛋白无交叉反应。计算以标准物的浓度为纵坐标（对数坐标），OD值为横坐标（对数坐标），在对数坐标纸上绘出标准曲线。推荐使用专业制作曲线软件进行分析，如curve expert 1.3，根据样品的 OD值由标准曲线查出相应的浓度，再乘以稀释倍数；或用标准物的浓度与OD 值计算出标准曲线的回归方程式，将样品的OD值代入方程式，计算出样品浓度，再乘以稀释倍数，即为样品的实际浓度。说明1. 在储
12、存及孵育过程中避免将试剂暴露在强光中。所有试剂瓶盖须盖紧以防止蒸发和污染，试剂避免受到微生物的污染，因为蛋白水解酶的干扰将导致出现错误的结果。2. 小心吸取试剂并严格遵守给定的孵育时间和温度。请注意在吸取标本/标准品，酶结合物或底物时，第一个孔与最后一个孔加样之间的时间间隔如果太大，将会导致不同的 “预孵育”时间，从而明显地影响到测量值的准确性及重复性。而且，洗涤不充分将影响试验结果。3. 试剂盒保存：部分试剂保存于-20，部分试剂保存于 2-8，具体以标签上的标示为准。4. 浓洗涤液会有盐析出，稀释时可在水浴中加温助溶。5. 刚开启的酶联板孔中可能会含有少许水样物质，此为正常现象，不会对实验结果造成任何影响。6. 中、英文说明书可能会有不一致之处，请以英文说明书为准。7. 所有的样品都应管理好，按照规定的程序处理样品和检测装置。8. 有效期：6 个月
