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1、PCR技术总论PCR原理Sample denaturatationPrimer annealingPrimer extensionPCR productPCR反应曲线标准的PCR反应体系 10扩增缓冲液 10ul4种dNTP混合物 各200umol/L引物 10100pmol模板DNA 0.12ugTaq DNA聚合酶 2.5uMg2+ 1.5mmol/L加双或三蒸水至 100ulPCR反应五要素引物（primer） 酶 （Taq DNA polymerase） dNTP （dATP,dGTP,dCTP,dTTP） 模板 （template） Mg2+ （magnesium）引物 引物是PCR
2、特异性反应的关键 PCR 产物的特异性取决于引物与模板 DNA互补的程度 理论上，只要知道任何一段模板DNA序列，就能按其设计互补的寡核苷酸链做 引物，用 PCR就可将模板DNA在体外大量扩增引物设计的原则（一）引物长度： 15-30bp，常用为20mer左右 引物的有效长度不能大于 38 mer，否则最适延伸 温度会超过TaqDNA聚合酶的最适温度（74） ，不能保证PCR扩增产物的特异性 引物扩增跨度：以500bp为宜 特定条件下可扩增长至10kb的片段 引物碱基：G+C含量以40-60%为宜 G+C太少扩增效果不佳，G+C 过多易出现非特异 条带 ATGC最好随机分布，避免5个以上的嘌呤
3、或嘧啶 核苷酸的成串排列引物设计的原则（二）避免引物内部出现二级结构 避免两条引物间互补， 特别是 3端的互补，否 则会形成引物二聚体，产生非特异性的扩增条带 引物 3端的碱基要求严格配对 特别是最末及倒数第二个碱基，以避免因末端 碱基不配对而导致PCR失败引物中有或能加上合适的酶切位点 被扩增的靶序列最好有适宜的酶切位点，这对酶 切分析或分子克隆很有好处引物设计的原则（三）引物的特异性： 引物应与核酸序列数据库的其它序列无明显同 源性引物量： 每条引物的浓度0.1 1umol或10 100 pmol，以最低引物量产生所需要的结果为好 引物浓度偏高会引起错配和非特异性扩增，且 可增加引物之间形
4、成二聚体的机会引物设计的原则（四） RT-PCR 引物设计特别注意： 跨越两个外显子酶及其浓度 目前有两种 Taq DNA 聚合酶供应 天然酶：从栖热水生杆菌中提纯 基因工程酶：大肠菌合成 一个典型的 PCR反应约需酶量 2.5U（指总 反应体积为100 ul时） 浓度过高可引起非特异性扩增，浓度过低则 合成产物量减少dNTP 的质量与浓度 dNTP的质量与浓度和 PCR扩增效率有密切关 系 dNTP呈颗粒状， 保存不当易变性失活 dNTP溶液呈酸性，使用时应配成高浓度后，以 1M NaOH或1M Tris-HCl的缓冲液将其pH调节到 7.07.5，小量分装，-20冰冻保存。多次冻融 会使d
5、NTP降解 在PCR反应中，dNTP应为50200umol/L，尤其 是注意4种dNTP的浓度要相等（等摩尔配制 ）， 如其中任何一种浓度不同于其它几种时（偏高或 偏低），就会引起错配。浓度过低又会降低PCR 产物的产量 dNTP 能与Mg2+结合，使游离的Mg2+浓度降低模板（靶基因，target gene） 模板核酸的量与纯化程度，是PCR成败与否 的关键环节之一 传统的DNA纯化方法通常采用SDS和蛋白酶 K 来消化处理标本 SDS 的主要功能是：溶解细胞膜上的脂类与蛋白 质，因而溶解膜蛋白而破坏细胞膜，并解离细胞 中的核蛋白，SDS 还能与蛋白质结合而沉淀 蛋白酶K 能水解消化蛋白质，
6、特别是与DNA结合 的组蛋白, 再用有机溶剂酚与氯仿抽提掉蛋白质 和其它细胞组份，用乙醇或异丙醇沉淀核酸模板（靶基因，target gene） 提取的核酸即可作为模板用于PCR反应 一般临床检测标本，可采用快速简便的方法 溶解细胞，裂解病原体，消化除去染色体的 蛋白质使靶基因游离，直接用于PCR扩增 RNA模板提取一般采用异硫氰酸胍或蛋白酶 K法，要防止RNase降解RNAMg2+浓度 Mg2+对PCR扩增的特异性和产量有显著的影 响 在一般的 PCR反应中，各种NTP浓度为 200umol/L时，Mg2+浓度为1.52.0 mmol/L 为宜 Mg2+浓度过高，反应特异性降低，出现非特 异扩
7、增， 浓度过低会降低 Taq DNA聚合酶 的活性，使反应产物减少PCR反应条件的选择 PCR反应条件: 温度 时间 循环次数温度与时间的设置： 设置变性-退火-延伸三个温度点 标准反应中采用三温度点法，双链DNA在 9095变性，再迅速冷却至40 60， 引物退火并结合到靶序列上，然后快速升温 至7075，在Taq DNA 聚合酶的作用下 ，使引物链沿模板延伸 对于较短靶基因（长度为100300bp时）可 采用二温度点法， 将退火与延伸温度合二 为一，一般采用94变性，65左右退火与 延伸 变性温度与时间： 变性温度低，解链不完全是导致PCR失败的最主要原因 一般9394lmin足以使模板D
8、NA变性 若低于93则需延长时间 但温度不能过高，因为高温环境对酶的活性有 影响。 此步若不能使靶基因模板或PCR产物完全 变性，就会导致PCR失败 退火(复性)温度与时间： 退火温度是影响PCR特异性的较重要因素 变性后温度快速冷却至4060，可使引 物和模板发生结合。由于模板DNA 比引物 复杂得多，引物和模板之间的碰撞结合机会 远远高于模板互补链之间的碰撞 退火温度与时间，取决于引物的长度、碱基 组成及其浓度，还有靶基序列的长度 对于20个核苷酸，G+C含量约50%的引物， 55为选择最适退火温度的起点较为理想引物的复性温度 通过以下公式帮助选择合适的温度： Tm值（解链温度）=4（G+
9、C）2（A+T） 复性温度=Tm值-（510） 在Tm值允许范围内，选择较高的复性温度可大大减少引物和模板间的非特异性结合，提高 PCR反应的特异性 复性时间一般为3060sec，足以使引物与模板之间完全结合 延伸温度与时间： Taq DNA聚合酶的生物学活性：7080 150核苷酸/S/酶分子70 60核苷酸/S/酶分子55 24核苷酸/S/酶分子高于90时，DNA合成几乎不能进行 延伸温度与时间： 延伸温度：一般选择在7075之间 常用温度为72 过高的延伸温度不利于引物和模板的结合。 延伸反应时间：根据待扩增片段长度而定 1Kb以内的DNA片段，延伸时间1min（足够） 34kb的靶序列
10、需34min 扩增10Kb需延伸至15min 延伸进间过长会导致非特异性扩增 对低浓度模板的扩增，延伸时间要稍长些循环次数 循环次数 决定PCR扩增程度 循环次数 主要取决于模板DNA的浓度 循环次数：选在3040次之间 循环次数越多，非特异性产物的量亦随之 增多PCR反应特点特异性强 灵敏度高 简便、快速 对标本的纯度要求低特异性强 关键：引物与模板的正确结合 引物与模板的结合及引物链的延伸是遵循碱 基配对原则的 合成反应的忠实性及Taq DNA聚合酶耐高温 性，使反应中模板与引物的结合（复性）可 以在较高的温度下进行，结合的特异性大大 增加，被扩增的靶基因片段也就能保持很高 的正确度。再通
11、过选择特异性和保守性高的 靶基因区，其特异性程度就更高PCR反应的特异性决定因素 引物与模板DNA特异正确的结合； 碱基配对原则； Taq DNA聚合酶合成反应的忠实性 ； 靶基因的特异性与保守性灵敏度高 PCR 产物的生成量是以指数方式增加的 ，能将皮克 ( pg=10-12 ) 量级的起始待测 模板扩增到微克( ug=10-6)水平 从 100 万个细胞中检出一个靶细胞 在病毒的检测中，PCR 的灵敏度可达 3 个 RFU (空斑形成单位) 在细菌学中最小检出率为3个细菌简便、快速 PCR反应用耐高温的 Taq DNA聚合酶，一 次性地将反应液加好后，即在DNA 扩增液 和水浴锅上进行变性-退火-延伸反应，一般 在24 小时完成扩增反应。扩增产物一般用电泳分析，不一定要用同位素，无放射性污 染、易推广对标本的纯度要求低 不需分离病毒或细菌及培养细胞， DNA 粗制品及总 RNA 均可作为扩增模板 可直接用临床标本如血液、体腔液、洗 嗽液、毛发、细胞、活组织等粗制的 DNA扩增检测
