糖皮质激素性骨质疏松模型大鼠实验生化研究

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1、针药结合对糖皮质激素造模骨质疏松大鼠 BMC、BMD 及骨代谢影响的实验研究 景涛1、2 贾叶1 成守仁2 卢小健2 (1.南京中医药大学第一临床医学院 210046; 2.南京体育学院医院 210014) 摘要:目的摘要:目的 探讨针药结合对糖皮质激素造模骨质疏松大鼠 BMD、BMC 及骨代谢影响的作用原理与机制。方法方法 选 用 3 月龄雌性 SD 大鼠 40 只,体重 17010g,随机分为空白对照组、模型组、药物组、针药组,每组 10 只。各组 大鼠连续造模和治疗 12 周后,扫描测得大鼠腰椎 BMC 和 BMD,并用放免法检测血清 E2、FSH、LH、CORT、ACTH、CRH 的指

2、标水平。结果结果 模型组大鼠 BMC、BMD 明显低于空白对照组和治疗组 (P0.05),与药物组比较 有显著性差异(P 0.05). but there were significant differences between acupuncture-drug combination group and drug group (P (相当于强的松) 7.5mg/d。尽管现代医学已经发展到一个很高的水平, 但对于因激素治疗所带来的副作用仍然没有很好的防 治手段。GCS 治疗可以引起多种不良反应,其中糖皮质 激素诱导的骨质疏松症(glucocortiocoids-induced osteopor

3、osis,GIO)可以导致椎体、肋骨、髋部等多 个部位骨折,严重影响了患者生活质量并增加社会负 担,是 GCS 的严重并发症之一,目前尚无有效的治疗 手段1、2。笔者在以往的临床研究中发现针灸对原 发性骨质疏松症有明显的治疗效果,为探讨糖皮质激 素诱导骨质疏松的机制以及有效的干预措施,笔者进 行了针药结合对糖皮质激素性骨质疏松模型的研究。 1.1.材料材料 1.11.1 实验动物实验动物 SD 清洁型雌性大鼠 40 只,由上海莱克实验动物有 限责任公司提供,许可证号 SCXK(沪)2003-0003。 1.21.2 药物药物 阿伦膦酸钠片(石家庄制药集团欧意药业有限公 司。产品批号:00906

4、0301):有效期:2012.03.26。 地塞米松磷酸钠注射液(江苏涟水制药有限公司。产品 批号:E090725):有效期:2012.05.30。 1.31.3 试剂盒试剂盒 (1).美国 ADL goat antirat Adrenocorticotropic Hormone Elisa 测定试剂盒 (Catalog No:ADL CD-A011 Lot No:RT110371 有效 期:JUN 2012) 。 (2).皮质醇放射免疫分析药盒 50T1 批号: 20101101。 (3).雌二醇放射免疫分析药盒 50T1 批号: 20101101。 (4).卵巢促激素放射免疫分析药盒 50

5、T1 批号: 20101029。 (5).促黄体生成激素放射免疫分析药盒 50T1 批号:20101029。 1.41.4 主要实验设备及仪器主要实验设备及仪器 (1)三级动物实验室(医学实验动物环境为鼠类 实验室,清洁级,合格证书 23-0 1 6,南京 中医药大学提供) 。 (2).美国产 lead-tech 型超低温冰箱 (3).美国 GE 公司产 LUNAR DPX-MD+型双能 X 线骨密度仪 (4).德国产 Labsystems Finnpipette 50、100l 型移液器 (5).HH-4 型数显恒温水浴锅(国华电器有限公司)(6).芬兰产 Thermo Multiskan

6、Spectrum spectrophotometer 型酶标仪 (7).sn-695B 型 智能放免 测量仪(上海原子核 研究所日环仪器一厂) 2 2方法方法 2.12.1 动物分组动物分组 将 40 只 SD 清洁型雌性大鼠观察 1 周后, 随机分为四组:空白对照组、模型组、药物组、针药 结合组,每组各 10 只。 2.22.2 动物造模动物造模 将 40 只雌性大鼠随机分为四组:空白 对照组、模型组、药物组、针药结合组,每组各 10 只。 各组动物均在 1824通风良好,湿度在 60-70%的环 境下饲养,自由饮水、摄食。 (1 1)空白对照组:)空白对照组: 同时每日用注射器灌胃生理盐水

7、 (灌胃剂量为:1ml) 。 (2 2)模型组:)模型组: 每周 2 次肌肉注射地塞米松,每次注 射量为:0.2mg/100g,连续用药 12 周。同时,每日用 注射器灌胃生理盐水(灌胃剂量为:1ml) 。 (3 3)药物组:)药物组: 每周 2 次肌肉注射地塞米松,每次注 射量为:0.2mg/100g,连续用药 12 周,同时采用灌胃 法给予阿伦膦酸钠片剂的水溶悬浊液每日灌胃次, 每次 10mg/kg,连续用药治疗 12 周。 (4 4)针药结合组:)针药结合组: 除采用药物组的造模和药物治疗 方法外,同时每天接受电针治疗 1 次。其具体方法为: 选用下三里穴位,取穴方案按照华兴邦氏的方法实

8、施, 用细美容针刺入穴位后,接电针仪进行电针刺激,连 续脉冲波、频率 3-4Hz、强度 4-5mA,以动物局部轻度 抖动为度,每次 10 分钟,每日 1 次,连续治疗 12 周。 每 2 周为 1 个电针疗程,暂停电针治疗 1 次。 各组大鼠造模和治疗 12 周后,摘除眼球取血,分 离血清,置于-20冰箱保存集中待测。 2.32.3 检测指标检测指标 2.3.12.3.1 骨密度检测:骨密度检测: 大鼠处死前 1 天,用 DEXA 骨密度 仪及所附小动物梯级标准模型和分析软件在其腰椎体 进行扫描,得出大鼠腰椎的骨密度(BMD)和骨含量 (BMC) 。( 注:大鼠 BMD、BMC 扫描部位 L3

9、 ) 2.3.22.3.2 生化指标测定生化指标测定 促肾上腺皮质激素(促肾上腺皮质激素(ACTHACTH) 、促肾上腺皮质激素释放激、促肾上腺皮质激素释放激 素(素(CRHCRH)测定)测定 首先,测定前将试剂盒放置室温40分钟,所有试 剂在使用前都轻轻摇匀; 准备浓缩洗涤液与新鲜的医 用双蒸水(1:20倍稀释) ,混匀后室温放置待用。取 出酶标板,依照次序对应分别加入100l的标准品于 空白微孔中(不同浓度的标准品移液时,采用不同的 吸头) ;分别标记样本编号,加入100l 血清于空白 微孔中(不同的样本采用不同的吸头) ;在标准品孔中 和样品孔中加入50l的酶标记溶液,用移液器反复吸 打

10、,进行混匀(不同的微孔取液采用不同的吸头) ;轻 微摇动酶标板,使得液体充分混匀,用保险膜密封酶 标板,然后置于37的水浴锅中准确水浴60分钟。然 后将酶标板取出,将其中的液体甩去,每个孔中全部 加满洗涤应用液后,立即甩去液体;每个孔中再次全 部加满洗涤应用液后,室温静置2分钟,其间每隔20- 30秒轻微振摇酶标板。2分钟后将孔中的洗涤应用液甩 去,在吸水纸上将酶标板拍干。再重复第个步骤6次;在吸水纸上将酶标板底部 上残留的水渍擦干;在每个孔中加入底物A 50l(不 同的微孔取液采用不同的吸头) ;在每个孔中加入底物 B 50l(不同的微孔取液采用不同的吸头) ,用移液 器反复吸打,进行混匀;

11、轻微振摇酶标板,然后在 37水浴锅中避光反应15分钟(酶标板置于铝制饭盒 中进行反应) ;每个微孔中加入50l的终止液, (不同 的微孔取液采用不同的吸头) ,用移液器反复吸打,进 行混匀;在Thermo Multiskan Spectrum spectrophotometer酶标仪上,450nm处测定OD。 标准曲线的制备: 以B/T计算NSB、S0结合百分率, 以B/B0计算标准及待测样品结合百分率,在半对数坐 标纸上绘制标准曲线,并查出样品值。或由自动计 数器预先编制程序,直接给出有关参数,标准曲线及 样本浓度。 NSB(NSB管的cpm数T管的cpm数)100 Bo(Bo管的cpm数N

12、SB管的cpm数)T管的 cpm数100 BBo(标准或样品管的cpm数NSB管的cpm 数)(Bo管的cpm数NSB管的cpm数)100 以Logit=ln(B/B0)/(1-(B/B0) ) 为横坐标, ln浓度为纵坐标,作标准曲线。 皮质醇(皮质醇(CORTCORT)雌二醇()雌二醇(E2E2) 、卵巢促激素(、卵巢促激素(FSHFSH) 、 促黄体生成激素(促黄体生成激素(LHLH)放射免疫测定)放射免疫测定 操作步骤(直接 取大鼠血清100ul进行测定) ,操作步骤(直接取血清 50l进行测定)充分混匀,室温放置15min后, 4 3500rpm离心15min,吸弃上清液,在计数器上

13、测定 各管沉淀的放射性计数cpm。 2.42.4 统计学处理统计学处理 所有实验进行数据均使用 SPSS11.5 版统计软件处 理,检测结果以均数( S)表示,多组间差异的 显著性采用单因素方差分析(F 检验) ,用student-newman-kruls法进行组间的两两比较。3 3结果结果 3 31 1 骨密度(骨密度(BMDBMD)检测)检测 表1 各组实验动物腰椎体的BMD对比( S;n=10) Tab.1 Comparison of BMD on lumber(L3)of vertebra of experimental rats in groups( S; n=10)g/cm2 组别

14、 第 3 腰椎体(g/cm2) 针药组 0.3690.0165* 药物组 0.3170.0130* 模型组 0.2370.0154 空白组 0.395 0.0121# 说明:12 周治疗后,第 3 腰椎体 BMD 与模型组比 较:*P0. O5;*P0. O5;*P0. O5;*P0. O5;*P0. O5;*P0. O5;*P0.05), 优于药物组;与针药 结合组比较,模型组的 BMD、BMC 水平最低 (P0.05) 。 上述针药结合组与模型组和药物组之间的 BMD、BMC 显著的差异可以说明,针灸可能通过对神 经内分泌网络的调节,而促进局部环境中许多细胞因 子等一系列极为复杂地改变,并

15、通过对机体全身性、 多环节的调节作用,而增加性腺上雌激素的受体敏感性或雌激素的受体数量;从而最终影响骨组织的微环 境而提高成骨细胞的活性,调节内环境微量元素的平 衡,促进矿物质在骨中的沉积,促进骨形成,抑制骨 吸收,纠正骨代谢的负平衡状态,防止了骨质的进一 步丢失,进而发挥抗 OP 的作用。 在本研究中,针刺后 E2、FSH、LH 的水平提高, 可能就是通过调节下丘脑垂体性腺轴功能的作用 来提高卵巢中未完全闭锁的卵泡以及垂体雌激素受体 的基因表达及雌激素活性,进而促进了睾酮向雌二醇 的转化,从而使血清中 E2 水平得到提高的。同时针刺 后 CORT、ACTH、CRH 的水平提高,亦可能是通过 下丘脑垂体肾上腺皮质腺轴的功能来发挥作用的。 正因如此笔者认为上述 6 种激素在各组所存在的差异 也可能与针药结合治疗组运用针刺进行预防性治疗, 进而在调节下丘脑垂体肾上腺皮质腺轴的同时又 参与调节下丘脑垂体性腺轴的功能有关。本实验 的结果在一定程度上支持了这一说法。 参考文献: 1 National Osteoporosis Foundatio

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