单克隆抗体的制备、纯化及鉴定

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1、1单克隆抗体的制备、纯化及鉴定一、实验目的:单克隆抗体制备是细胞免疫学的一个重要里程碑,它涵盖了细胞培养、细胞融合、免疫动物和抗体效价检测等各个方面内容。二、实验原理:骨髓瘤细胞在体外培养能大量无限增殖,但不能分泌特异性抗体;而抗原免疫的 B 淋巴细胞能产生特异性抗体,但在体外不能无限增殖。将免疫脾细胞与骨髓瘤细胞融合后形成的杂交瘤细胞,继承了两个亲代细胞的特性,既具有骨髓瘤细胞能无限制增殖的特性,又具有免疫 B 细胞合成和分泌特异性抗体的能力。经在 HAT 培养基含有次黄嘌呤(H)、氨基喋呤(A)和胸腺嘧啶核苷(T)中进行选择性培养,未融合的脾细胞因不能在体外长期存活而死亡;未融合的骨髓瘤细

2、胞合成 DNA 的主要途径被培养基中的氨基蝶呤阻断,又因缺乏次黄嘌呤-鸟嘌呤-磷酸核糖转移酶(HGPRT),不能利用培养基中的次黄嘌呤完成 DNA的合成过程而死亡。只有融合的杂交瘤细胞由于从脾细胞获得了次黄嘌呤-鸟嘌呤-磷酸核糖转移酶,因此能在 HAT 培养基中存活和增殖。经过克隆选择,可筛选出能产生特异性单克隆抗体的杂交瘤细胞,在体内或体外培养,即可无限制地大量制备单克隆抗体。三、试剂与器材:细胞培养板、解剖器械、平皿、酶标仪、加样器、细胞计数板、CO2 培养箱、倒置显微镜等。四、操作方法:1、抗原制备;一般而言,抗原的纯度不很重要,特别是免疫原性较强的抗原。A可溶性抗原(蛋白质) 以 1m

3、g/ml5mgml 的溶液加等量的弗氏完全佐剂乳化,分多点小鼠皮下注射,总量为 0.3ml0.6ml,间隔周再同样注射一次,天后,断尾取血一滴,测抗体效价,选滴度高的小鼠做融合试验。一个月后可以经静脉(尾静脉)给予无佐剂抗原 0.2ml0.4ml,天后,杀死小鼠取脾做融合用。2B. 颗粒性抗原 如抗原来源方便,可以不加佐剂而增加免疫次数,缩短间隔时间。例如用羊红血球免疫小白鼠,以浓度每只皮下注射.ml,每周次,共免疫次,取脾前天,再免疫一次即可。有人认为最后一次免疫剂量要大,大到近于免疫耐受的程度更好。2、免疫动物;目前应用最广的是小白鼠和大白鼠,尤以小白鼠为好。品系以 Balb/c 小白鼠应

4、用最广,因为所有的小白鼠骨髓瘤系均从 Balb/c 小白鼠系诱导出来。Balb/c 系小白鼠必须用纯系的,雌雄均可,以 812 周龄为宜。免疫程序、剂量和方法关系到能否得到所需要的单克隆抗体的关键之一。正常小鼠脾脏含有能产生各种不同抗体的 B 淋巴细胞,一只纯种小白鼠能产生 1.01075.0107 种不同的抗体。因此一只正常的小白鼠的脾细胞与小鼠骨髓瘤融合,只能有千万分之一的机会获得某一种特定抗体。所以为了提高得到某种杂交瘤的机会,必须加强免疫,使产生特异性抗体的 B 淋巴细胞大量增加。B 淋巴细胞的不同发育阶段对获得阳性杂交瘤也有很大影响。有人认为处在转化时期的 B 淋巴细胞可能更易于融合

5、,而免疫以后 78 天,虽然是抗体产生的高峰时期,但形成有活力的杂交瘤细胞的可能反而减少。故一般认为加强免疫后的第三天应杀鼠取脾做细胞融合。3、免疫脾细胞和骨髓瘤细胞的制备;脾细胞制备(1) 免疫过的血清抗体滴度高的 Balb/c 鼠,拉颈或用 CO2处死小白鼠。(2) 将小鼠放于 70酒精中浸泡消毒,取出固定于板上,在无菌条件下取脾。(3) 把脾放入 5ml 含有 2.5FCS 的 1640 液中,冰浴下轻轻洗去脾上的红血球。(4) 用镊子轻轻挤压脾,做成脾细胞悬液,用毛细管将悬液移入小试管中。(5) 直立小试管 3min,使大块的结缔组织下沉,把细胞悬液移入离心管中。(6) 以 2.5FC

6、S1640 充满离心管,并以 400g 离心 7min10min(与此同时应开始制备骨髓细胞)。(7) 把沉淀用约 10ml 的新鲜培养液再悬浮。3(8) 重复、步骤。(9) 计算细胞,以台盼兰染色用相差显微镜检查,活细胞数应高于 80为合格。骨髓瘤细胞制备骨髓瘤细胞能产生并分泌大量的免疫球蛋白,这样的瘤细胞融合后,可能影响或降低所分泌抗体的滴度,所以必须选育出非分泌免疫球蛋白缺陷型的骨髓瘤细胞。选择骨髓瘤细胞的条件:该瘤细胞系的来源应与制备脾细胞小鼠为同一品系,以便两者的组织相容性抗原一致;骨髓瘤细胞必须是静息状态,不产生 球蛋白或不分泌到细胞外;骨髓瘤细胞生长需要一个较高的细胞密度,最好

7、106 个细胞/ml;生长速度快,繁殖时间短。目前常用的 Balb/c 小鼠产生的骨髓瘤细胞株有:S194/5XXOBU1;SP20Ag14(简称 SP2);P2X? Ag8653(简称 653);FO以 653 最为常用,它是由矿物油 4甲基15 烷(Pristane,降植烷)诱发出来的一种浆细胞瘤(Minerol Oil plasmacy toma,MOPC)并经过培育形成一株 8-氮鸟嘌呤有抵抗力的亚系。骨髓瘤细胞一般由有关单位直接引入,保存于-195液氮罐中,试验时复苏、增殖、传代即可。由于骨髓瘤细胞是半贴壁状态,很容易脱落,因此不需要胰酶处理。为了防止出现返祖现象,在融合前,可将培养

8、基内加入 15g/ml 8氮鸟嘌呤。取约 11076107对数生长期(即培养 15h20h)的骨髓瘤细胞,在室温离心(400g)10min,沉淀以 2.5FCS1640 液再悬浮并计数。饲养细胞在体外的细胞培养中,单个的或数量很少的细胞不易生存与繁殖,必须加入其它活的细胞才能使其生长繁殖,加入的细胞称之为饲养细胞(Feeder cell)。在细胞融合和单克隆的选择过程中,就是在少量的或单个细胞的基础上使其生长繁殖成群体,因此在这一过程中必须使用饲养细胞。许多种类的动物细胞都可以做饲养细胞,如正常的脾细胞、胸腺细胞、腹腔渗出细胞等,常选用腹腔渗出细胞,其中主要是巨噬细胞和淋巴细胞。应用腹腔渗出细

9、胞的好处是4:一方面做饲养细胞,另一方面巨噬细胞可以吞噬死亡的细胞和细胞碎片,为融合细胞的生长造成良好的环境。腹腔细胞的来源可以是与骨髓瘤细胞同系鼠。也可以是其他种类的小鼠,如 C57 鼠,昆明小白鼠等。(1)拉颈处死小鼠。(2)70酒精浸泡消毒 10min。(3)用手术剪将小鼠腹部剪开一小口,剥开皮肤,露出腹腔。(4)用注射器将 4ml 11.6蔗糖溶液注入腹腔,用手指轻揉 1min 仍用该注射器回抽腹腔液体,加入离心管。(5)1 000rmin 离心 10min。(6)取上清,以 HAT 选择培养液将细胞制成悬液。台盼蓝染色计数活细胞,使每毫升含 40 万个活细胞。(7)以 1ml 吸管将

10、细胞种入微量培养皿,每孔 0.05ml,含 2 万个细胞,放入 CO2 培养箱培养,即可供细胞融合和克隆化之用。如果在融合后发现在培养孔中饲养细胞数量少,则可以在细胞换液时再加入一些。4、细胞融合; 小鼠骨髓瘤可以在体外培养液中生存并大量繁殖。经过用某种抗原免疫的小鼠及淋巴细胞能分泌某种抗体,但小鼠的 B 淋巴细胞在一般培养某中不易存活。如将小鼠的骨髓瘤细胞与分泌霜种抗体的 B 淋巴细胞在融合因子(聚乙二醇,PEG)作用下产生融合,则融合的细胞既具有肿瘤细胞易分裂增殖的特性,又具有 B 淋巴细胞分泌特异性抗体的能力,在 HAT 选择培养基中可以选择得到杂交细胞。这种融合的被称为淋巴细胞杂交瘤的

11、细胞可以在体外培养液中大量繁殖生长,从培养液上清中可以收集到大量某 B 淋巴细胞产物单克隆抗体。(1)取末次免疫后的第 3 天小鼠脾细胞悬液,将 108 小鼠脾细胞与 1-5107SO2/O 小鼠骨髓瘤细胞混合于 50 毫升刻度离心管中,经 1000 转/分离心 7 分钟;5(2)弃上清液,尽可能除得干净,用手指轻叩离心管底部,使沉淀混匀如糊状,离心管置 37水中进行水浴(一小烧杯中),准备融合;(3)将 37水浴中保温的 50%PEG1.0 毫升(实际应用 0.7 毫升)用滴管缓慢滴入离心管中,在 60 秒钟内滴完,在 37水浴中边滴边摇边离心管,使细胞保存在混匀状态;(4)加完 PEG 后

12、,将细胞悬液放在 37水浴中静置 90 秒钟,立即在 24 分钟内加入 15 毫升无血清的 RPMI-1640 培养基(37),开始要一滴一滴地加,由于稀释使 PEG 停止作用。注意尽可能不搅动细胞;(5)再经 100 转/分离心 10 分钟。弃去上清液,加 25 毫升 HAT 培养液,轻轻混匀,将混悬液分装已有巨噬细胞的两个 24 孔培养板中,每孔 0.5 毫升;(6)将培养板放在水蒸汽饱和 CO2 孵箱中,37孵育。CO2 含量为 5%;(7)每 2-3 天换一次 HAT 培养液,连续 2 周观察杂交瘤细胞是否出现。2 周后使用 HT 培养基。5、单克隆抗体检测 用检测抗体的方法从杂交细胞

13、中筛选出生产指定抗体的杂交株是很重要的。检测抗体的方法很多,从沉淀反应到放射免疫测定。由于细胞培养液中的抗体浓度通常是很低的,而且传统的检测方法多是以多价抗原与多克隆抗血清相反应。杂交瘤产生的抗体则是单克隆的,所以并不是每项方法都能适用。一定要选择敏感的、快速的、一次又能检测多份样品的方法。如:膜荧光检测法(1)材料:培养液 HEM 或 RPMI1640;荧光试剂:异硫氰酸荧光素(FITC)标记的抗小鼠免疫球蛋白;50甘油缓冲液:1 份甘油加 1 份体积 0.05Mol/L pH 7.2 PBS 液混合即成;荧光显微镜、载玻片、盖玻片、吸管等。(2)操作方法:用培养液洗涤二次细胞,悬浮成 2.

14、0107ml;50l 细胞悬液加 50l 培养上清液混合,置 430min,用培养液洗涤 3 次,1 000r/min 离心;以 50lFITC抗小鼠免疫球蛋白重新悬浮压积细胞,水浴 30min60min;用冷培养液洗 3 次细胞,重新悬浮;取一滴细胞悬液滴在玻片上,复盖片,用甘油缓冲液封固,置荧光显微镜下观察。着色细胞也可以在固定后6观察,一滴细胞悬液,涂片、风干,用 95酒精固定 10min,固定后的载玻片用 PBS 洗涤,盖上盖玻片,进行观察。免疫球蛋白和亚类球蛋白的检测 以琼脂双扩散试验法进行,此法简单易操作,特异性好。注意必须将培养液浓缩 1050 倍,否则做双向琼扩不出现沉淀线。其

15、检测方法为:(1)制备各种兔抗小鼠 IgG14、 IgM12、IgA12 和 K、 抗血清,也可直接购买。(2)取 5ml 培养物的上清液缓慢加入 0.5ml 的饱和硫酸铵溶液,混匀,静置 3h,离心沉淀,去上清,沉淀加 0.05ml 蒸馏水溶解。(3)制成 1琼脂糖凝胶板,打孔。中间孔加 20l 浓缩上清液,周围孔加 20l 特异性抗血清,以 10l 正常小鼠血清作对照。也可以采用酶联免疫吸附试验 ELISA、间接血凝试验以及放射免疫等方法检测。6、克隆化经过抗体测定的阳性孔,可以扩大培养,进行克隆,以得到单个细胞的后代分泌单克隆抗体。克隆的时间一般说来越早越好。因为在这个时期各种杂交瘤细胞

16、同时旺盛生长,互相争夺营养和空间,而产生指定抗体的细胞有被淹没和淘汰的可能。但克隆时间也不宜太早,太早细胞性状不稳定,数量少也易丢失。克隆化的阳性杂交瘤细胞,经过一段时期培养之后,也还会因为细胞突变或特定染色体的丢失,使部分细胞丧失产生抗体的能力,所以需要再次或多次克隆化培养。克隆化次数的多少由分泌能力强弱和抗原的免疫性强弱而决定。一般说,免疫性强的抗原克隆次数可少一些,但至少要 35 次克隆才能稳定。克隆化的方法很多,包括有限稀释法、显微操作法、软琼脂平板法及荧光激活分离法等。有限稀释法1材料(1)微量培养盘,盘内各孔于克隆化前一天培养小鼠腹腔细胞(即饲养细胞)每孔 2 万4 万。7(2)HT 培养基2操作方法(1)取出抗体阳性孔细胞,用 HT 培养液制成细胞悬液。并取样进行台盼兰染色,计数。(2)用 HT 培养液将细胞稀释成 200 个/ml、40 个/

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