《质粒DNA测定实验报告》由会员分享，可在线阅读，更多相关《质粒DNA测定实验报告（11页珍藏版）》请在金锄头文库上搜索。
1、生物化学实验报告生物化学实验报告姓姓 名：名： 学学 号：号： 专业年级：专业年级： 组组 别：别： 生物化学与分子生物学实验教学中心生物化学与分子生物学实验教学中心实验名称实验名称质粒质粒 DNADNA 的提取、定量与酶切鉴定的提取、定量与酶切鉴定实验日期实验日期2014-12-2014-12-1111实验地点实验地点第第 4 4 实验室实验室合作者合作者指导老师指导老师评分评分教师签名教师签名批改日期批改日期一、实验目的一、实验目的1.掌握 PCR 基因扩增的原理和操作方法2.掌握碱裂解法提取质粒的方法 3.了解紫外吸收法检测 DNA 浓度与纯度的原理、方法 4.学习水平式琼脂糖凝胶电泳操
2、作二、实验原理二、实验原理（一） 、第一部分 聚合酶链式反应1. PCR（Polymerase Chain Reaction）即聚合酶链式反应，是指在 DNA 聚合酶催化下，以 DNA 为模板，特定引物为延伸起点，通过变性、退火、延伸等步骤，在体外复制DNA 的过程。 1)加热使模板 DNA，在高温下 90-95 变性，双链解链；2)降低溶液温度，使合成引物在低温（3570,一般低于模板 Tm 值的 5左右） ，与模板 DNA 互补退火形成部分双链；3)溶液反应温度升至中温 72，在 Taq 酶作用下，以 dNTP 为原料，引物为复制起点，模板 DNA 的一条单链在解链和退火之后延伸为一条双链
3、。（二） 、第二部分 质粒 DNA 提取与定量1.质粒（Plasmid）1)独立于细菌染色体外，能独立自主复制的闭合环状 DNA 分子；2)存在于细菌，放线菌，真菌以及一些动植物细胞中，在细菌细胞中最多。2.碱裂解法、1)基于染色体 DNA 与质粒 DNA 的变性与复性的差异；2)高碱性条件下，染色体 DNA 和质粒 DNA 变性；3)当以高盐缓冲液调节其 pH 值至中性时，变性的质粒 DNA 复性并保存在溶液中，染色体 DNA 不能复性而形成缠连的网状结构，通过离心形成沉沉淀去除。3.离心层析柱1)硅基质膜在高盐、低 pH 值状态下选择性地结合溶液中的质粒 DNA，不吸附蛋白质、多糖等物质；
4、2)通过去蛋白液和漂洗液将杂质和其它细菌成分去除；3)低盐，高 pH 值的洗脱缓冲液将纯净质粒 DNA 从硅基质膜上洗脱。4.紫外光吸收法1)物质在光的照射下会产生对光的吸收效应；2)而且物质对光的吸收是具有选择性的；3)各种不同的物质都具有其各自的吸收光谱。4)因此不同波长的单色光通过溶液时其光的能量就会被不同程度的吸收，光能量被吸收的程度和物质的浓度有一定的比例关系。（三） 、第三部分 酶切鉴定1. 限制性内切酶1)限制性内切酶（restriction endonuclease）是 DNA 操作过程中所使用的基本工具；2)特异性地结合于一段被称为限制酶识别序列的特殊 DNA 序列之内或其附
5、近的特异位点上，并在此切割双链 DNA；3)分子克隆中常用的为 II 类限制酶，其识别位点长度为 4、5 或 6 个核苷酸的反向重复序列。（四） 、第四部分 琼脂糖凝胶电泳1. 天然琼脂1)天然琼脂（Agar）是一种多聚糖，主要由琼脂糖（Agarose ，约占 80）及琼脂胶（Agaropectin）组成；2)琼脂糖是由半乳糖及其衍生物构成的中性物质，不带电荷；3)琼脂胶是一种含硫酸根和羧基的强酸性多糖，由于这些基团带有电荷，在电场作用下能产生较强的电渗现象，加之硫酸根可与某些蛋白质作用而影响电泳速度及分离效果。琼脂糖透明无紫外吸收，因此，目前多用琼脂糖为电泳支持物进行平板电泳。 2.基本原理
6、1)琼脂糖是一种天然聚合长链状分子，可以形成具有刚性的滤孔，凝胶孔径的大小决定于琼脂糖的浓度；2)DNA 分子在碱性环境中带负电荷，在外加电场作用下向正极泳动；3)DNA 分子在琼脂糖凝胶中泳动时，有电荷效应与分子筛效应。不同的DNA，分子量大小及构型不同，电泳时的泳动率就不同，从而分出不同的区带(迁移速度与分子量的对数值成反比关系)。三、材料与方法：三、材料与方法：（一）实验材料1.试剂1)菌液：大肠杆菌 DH5a 菌株(含靶基因 CHD5 片段的 pMD19-T)2)引物： 正向： 5 GTA AAA CGA CGG CCA GT 3反向: 5 CAG GAA ACA GCT ATG AC
7、 33) 2Premix Taq： Taq 酶：5U/l 4dNTP: 各 10mmol/L10缓冲液（buffer）: 500mmol/L KCl，100mmol/L Tris-HCl 4)灭菌去离子水5)含 pMD19-T 质粒的大肠杆菌 DH56)LB 培养基（液体、固体）7)AXYGEN 试剂盒质粒提取试剂盒（爱思进，中国）a)溶液 P1（S1)b)溶液 P2 (S2）c)溶液 P3（S3）d)去蛋白液 PE（W1)e)漂洗液 WB(W2）f)洗脱液 EB（Eluent)8)DNA Marker 9)电泳缓冲液2.仪器与器材1)PCR 仪(BioRad MJ mini)2)台式离心机3
8、)微量加样枪4)灭菌的薄壁离心管5)凝胶电泳系统6)凝胶成像系统7)恒温培养箱8)恒温摇床9)超净工作台10)台式离心机11)高压灭菌锅（二）方法与步骤部分方法步骤注意事项1.注意每换一种试剂换一个新吸头) 2.如配好的反应液较多沾到管壁上，可将 PCR 反应管置台式离心机中瞬时离心，使反应液集中于管底，然后将反应管放到基因扩增仪(PCR 仪)上。用微量加样枪加试剂时，同种试剂可以不用换吸头，每次换一次不同试剂时要换一个新吸头。 3.在 PCR 中，如果配好的反应液较多沾到管壁上，要将 PCR 反应管置台式离心机中瞬时离心，使反应液集中于管底，然后才将反应管放到基因扩增仪上。 1)4.要根据质
9、粒的大小、大肠杆菌菌株、裂解后用于纯化的技术和实验要求选择碱裂解法方法来提取质粒DNA。 5.在提取质粒 DNA 时，菌液一定悬浮均匀，不能有结块。 6.在质粒 DNA 提取的实验中，加入溶液 S2 时，时间不能太久，动作要温柔，轻轻颠倒几次。 7.在质粒 DNA 提取实验中，复性时间不能太长。 8.在质粒 DNA 提取实验中，将上清液转移到吸附柱时，需小心谨慎，避免有蛋白质掺和进去，需用微量加样枪100ul 或 200ul 分几次取。 9.执比色皿时，应该拿着比色皿的粗糙面，不能触碰光滑面。空白对照比色测定和样品比色测定应该在同一比色皿中检测。 10.在酶切反应中，酶量的选择任何时候 2 种
10、酶的总量不能超过反应体系的 1/10体积。四、结果与讨论：四、结果与讨论：1.实验记录测量次数质粒 DNA 浓度 (g/ml)Ratio 值(A260/A280)195.41.771)295.51.78397.11.79平均值95. 71.782.结果与计算相关实验图片：3.分析与讨论1)图片分析a)在图片三中，其他三类 DNA 与 Maker 相比较，可知质粒 DNA 的分子大小在 2000bp3000bp，酶切反应的质粒 DNA 片段分子大小在 3000bp 左右，PCR 的 DNA 分子大小在 450bp。 b)预期 PCR 产物大小约 400500bp，基本符合。 2)原因分析a)PC
11、R 颜色较浅，有可能与点样前操作失误相关。4.复习与思考1)碱法提质粒中溶液、的作用？溶液：葡萄糖悬浮细胞，EDTA 鳌合金属离子使 DNase 失活。溶液：细胞壁肽聚糖在碱性下水解，核酸和蛋白质变性。溶液：酸性条件下质粒 DNA 复性，变性蛋白-SDS线性 DNA 沉淀，Na可中和 DNA。2)结合实验情况，如何提高限制性酶切的反应效率？a) 酶量的选择任何时候 2 种酶的总量不能超过反应体系的 1/10 体积，而且最大反应体系最好不要小于 20 ul；b) 减少能抑制酶反应的主要污染 DNA 的某些物质，如酚、氯仿、乙醇等；c) 合适离子强度，主要是反应缓冲液中的离子强度,如 NaCl 和 Mg2+,可以激发酶切反应；d) 一般应尽量减小反应体系，且酶切反应中甘油浓度应低于 5%；e) 保温时间与温度。
