猴D型逆转录病检疫技术规范.doc

上传人:jiups****uk12 文档编号:39255277 上传时间:2018-05-13 格式:DOC 页数:16 大小:927KB
返回 下载 相关 举报
猴D型逆转录病检疫技术规范.doc_第1页
第1页 / 共16页
猴D型逆转录病检疫技术规范.doc_第2页
第2页 / 共16页
猴D型逆转录病检疫技术规范.doc_第3页
第3页 / 共16页
猴D型逆转录病检疫技术规范.doc_第4页
第4页 / 共16页
猴D型逆转录病检疫技术规范.doc_第5页
第5页 / 共16页
点击查看更多>>
资源描述

《猴D型逆转录病检疫技术规范.doc》由会员分享,可在线阅读,更多相关《猴D型逆转录病检疫技术规范.doc(16页珍藏版)》请在金锄头文库上搜索。

1、ICS 点击此处添加中国标准文献分类号SN中华人民共和国 出入境检验检疫 行业标准XX/T XXXXXXXXX代替 SN/T 1174-2003猴 D 型逆转录病检疫技术规范Quarantine protocol for type D simian retroviruses 点击此处添加与国际标准一致性程度的标识(征求意见稿)(本稿完成日期:2012-10-01)XXXX - XX - XX 发布XXXX - XX - XX 实施中 华 人 民 共 和 国国家质量监督检验检疫总局 发 布/T XXXXXXXXXI前 言本标准按照GB/T1.1给出的规则起草。 本标准代替SN/T 1174-20

2、03猴D型逆转录病抗体检测方法本标准与SN/T 1174-2003主要的技术性差异如下:增加了病原的分离及鉴定。增加了反转录聚合酶链式反应。本标准由国家认证认可监督管理委员会提出并归口。本标准起草单位:中华人民共和国云南出入境检验检疫局、中华人民共和国深圳出入境检验检疫局本标准主要起草人:艾军,杨俊兴,杨云庆,张光培,叶玲玲,祝贺,周晓黎,董俊本标准所代替标准2003年首次发布,本次为第一次修订。/T XXXXXXXXX1猴 D 型逆转录病检疫技术规范1 范围本标准规定了猴D型逆转录病毒的病原分离、鉴定,血清抗体检测方法。本标准适用于猴D型逆转录病毒的检测、抗体的流行病学调查。2 规范性引用文

3、件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本 文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB/T18088 出入境动物检疫采样3 疾病概述猴 D 型逆转录病毒。其病原、流行病学、临床症状参见附录 A。4 现场检验检疫及采样 4.1 现场检验检疫 逐头进行临床检查,根据临床表现和特异性病理变化做出初步诊断。4.2 采样 按 GB/T18088 标准规定,逐头进行采样,并按规定填写送样单送实验室。5 缩略语5.1 SRV,D type simian retroviruses 猴 D 型逆转录病毒 5.2 CPE,cytop

4、athic effect细胞病变作用5.3 RT-PCR反转录聚合酶链式反应5.4 DEPC,diethyl pyrocarbonate焦碳酸二乙酯5.5 Trizol/T XXXXXXXXX2酚与异硫氰酸胍组成的均相溶液5.6 AMV-RT鸟成骨髓细胞白血病病毒的逆转录酶 6 病毒分离及鉴定6.1 病毒分离6.1.1 试剂与材料6.1.1.1 Raji 细胞。6.1.1.2 培养液:1640 培养基中加入 10%的胎牛血清。6.1.1.3 维持液和稀释液:维持液为 1640 培养基中加入 2%的胎牛血清。稀释液为维持液不加 2% 的胎牛血清。6.1.2 设备6.1.2.1 倒置光学显微镜。6

5、.1.2.2 二氧化碳培养箱。6.1.2.3 研钵、离心机。6.1.2.4 可调微量移液器。6.1.2.5 细胞培养瓶、细胞培养板等。6.1.3 样品采集与处理6.1.3.1 血液、唾液样品采集与处理:取血浆、唾液等样品,按 1:5 比例加入稀释液, 置乳钵中研磨,3 000r/min 离心 20min,取上清液, 0.45m 滤膜过滤,置-70保存备用。6.1.3.2 组织样品采集与处理:无菌采集动物淋巴结、器官组织样品,剪碎后加入稀释液 10mL(含青霉素 2 000IU/mL、链霉素 2 000g/mL),置乳钵中研磨,3 000r/min 离心 20min,取上清液,0.45m 滤膜过

6、滤,置-70保存备 用。6.1.4 接种敏感细胞6.1.4.1 处理后的样品按 1:10 比例接种于悬浮的 Raji 细胞。6.1.4.2 37 5% CO2培养箱中培养,24h 后逐日观察细胞病变(CPE),连续观察 5d-7d。6.1.5 判定盲传2代,无细胞肿大、死亡等病变现象(CPE)出现,判为病毒分离阴性;出现细胞病变,则需进 一步进行鉴定。/T XXXXXXXXX36.2 病毒鉴定采用RT-PCR等方法进行。7 反转录聚合酶链式反应(RT-PCR)7.1 试剂和材料7.1.1 引物根据 p27 蛋白编码基因保守序列设计,其引物序列如下:引物 A:5- CCAGTAACGGAGACT

7、ATGGATGGACAAG -3;引物 B:5- CATTGCCAGACCTTGCTGGTAAGAGGG -3; 扩增产物为 678bp,扩增参考序列见附录C。7.1.2 反转录试剂Trizol,AMV-RT(13U/L),dNTPs(10mmoL/L),RNasin(40U/L),Taq DNA 酶 (5U/L),RT-PCR 和 PCR 缓冲液,电泳缓冲液(TBE,配制见附录 B),溴化乙锭溶液 (10mg/mL,配制见附录 B),DEPC 水( 配制见附录 B),琼脂糖,DNA 分子量标准,随机引物 (25m)。7.2 设备高速冷冻离心机、PCR 仪、凝胶电泳仪、凝胶成像系统7.3 操作

8、方法7.3.1 对照样品制备阳性对照:感染 SRV 病毒的细胞培养物。阴性对照:正常 Raji 细胞或未感染动物的红细胞。7.3.2 RNA 提取7.3.2.1 在样品处理区进行(除本标准规定的方法外,也可采用其它等效的 RNA 提取方法,具体操 作见有关试剂说明书)。所有 RNA 提取器皿用 DEPC 水浸泡 24h,灭菌后方可使用。7.3.2.2 取 n 个 1.5mL 灭菌 Eppendorf 管,其中 n 为待检样品数、一管阳性对照及一管阴性对照之 和,对每管进行编号标记。7.3.2.3 每管加入 750L Trizol,然后分别加入待检样品、阳性对照和阴性对照各 250L,混匀, 静

9、置min;再加入 200L 三氯甲烷,混均,静置 5min,于 4条件下,12 000r/min 离心 15min。/T XXXXXXXXX47.3.2.4 取相同数量的 1.5mL 灭菌 Eppendorf 管,加入 500L 异丙醇(-20预冷),对各个管进行 对应编号。吸取离心后各管中的上清液转移至相应的新管中,上清液约吸取 500L(注意不要吸出 中间白色絮状层),轻轻颠倒均匀。7.3.2.5 于 4条件下,12 000r/min 离心 15min。取出 Eppendorf 管,轻轻倒去上清液,加入 1mL75%乙醇,颠倒洗涤。7.3.2.6 于 4条件下,12 000 r/min 离

10、心 15min。取出 Eppendorf 管,轻轻倒去上清液,倒置于吸 水纸上,吸干液体,不同样品应在吸水纸不同地方吸干。7.3.2.7 每管加入 20L 灭菌 DEPC 水,轻轻混均,溶解管壁上的 RNA,2 000r/min 离心 5s,冰上 保存备用。提取的 RNA 须在 2h 内进行 RT-PCR 扩增或放置于-70冰箱备用。7.3.3 cDNA 的合成7.3.3.1 RNA 的变性:在 eppendorf 管中依次加入:随机引物(N6),2L;提取的 RNA 7L ;DEPC 水,5L。瞬时离心,70 10min,冰浴 2min。3 000r/min,瞬时离心 30s。7.3.3.2

11、 反转录:于 7.3.3.1 eppendorf 管中依次加入:5反转录酶缓冲液, 4L;dNTPs,1L;RNasin,0.5L;AMV 反转录酶,0.5L。瞬时离心,42 60min;70 15min;冰浴 3min,立即进行 PCR 扩增或-20保存备用。7.3.4 PCR 扩增反应 7.3.4.1 在 PCR 管中依次加入以下试剂:10PCR 缓冲液 5L,dNTPs 1L,Taq DNA 酶 0.5L, 引物 A (25M) 1L,引物 B (25M) 1L,cDNA 5L,DEPC 水,36.5L。7.3.4.2 反应管瞬时离心,置 PCR 仪内运行下列程序:94预变性 2min;

12、94 30s,52 30s,72 30s,运行 35 个循环;72 7min;4保存。 7.3.5 PCR 产物的检测7.3.5.1 1.0%琼脂糖凝胶的制备,见附录 B。7.3.5.2 取两次扩增产物各 10L 与载样缓冲液混合,分别加入凝胶孔中。恒压 58V/cm,电泳 30min60min;紫外检测仪下观察结果、照像。7.3.5.3 结果判定: PCR 扩增后,阳性对照出现一条 678bp 的特异 DNA 条带。阴性对照和空白对照没有核酸条带。在阳性样品 PCR 扩增出现目的核酸条带,而阴性对照和空白对照均成立的情况下,进行检测样品的判定。待检样品 PCR 扩增物,经电泳出现 678bp

13、 的 DNA 条带,初判为病毒核酸阳性。取初判为病毒核酸阳性 PCR 产物进行测序,如与 SRV 参考序列同源性较高,则综合判为病毒核酸阳性。8 酶联免疫吸附试验/T XXXXXXXXX58.1 试剂和设备8.1.1 试剂8.1.1.1 抗原:SRV 感染 Raji 细胞,100%病变后收获培养液,反复冻融二至三次,4 3000r/min 离心 20min,取上清液备用。8.1.1.2 抗体 鼠源性 SRV 单克隆抗体。8.1.2 设备酶标仪,可拆 96 孔酶标板,单孔道、多孔道可调微量移液器、37恒温箱。8.1.3 试验程序8.1.3.1 用 pH 9.6 的包被液稀释抗原,加入酶标板,每孔

14、 100L,4 度过夜。8.1.3.2 洗板取出酶标板弃去液体,每孔加洗液200 L,洗板,共三次。最后一次倒置拍干。8.1.3.3 封闭每孔加封闭液 100L,37反应 1 h;8.1.3.4 洗板按8.1.3.2 操作。8.1.3.5 加样样品、强阳性对照、弱阳性对照、阴性对照用稀释液作 1:5 稀释,混匀,加入 ELISA 反应板,每孔 50L;37反应 1 h;8.1.3.6 加 SRV 单克隆抗体每孔加50 L SRV单克隆抗体工作液,震荡混匀。37作用30min。8.1.3.7 洗板按8.1.3.2 操作。8.1.3.8 加酶结合物各孔加50L羊抗鼠IgG-HRP,轻轻混匀。酶标板

15、置37作用30min。8.1.3.9 洗板按8.1.3.2 操作。8.1.3.10 加底物液每孔加 100 L 底物液,37作用 10min。8.1.3.11 终止反应/T XXXXXXXXX6取出反应板,每孔快速加入100L终止液,在30 min内测其OD值。8.1.3.12 测吸光值 用酶标仪在 450nm 波长下,测定其吸光值。8.1.3.13 结果计算8.1.3.13.1 计算抑制百分比(PI):被检血清平均OD值抑制百分比(PI)=100 100阴性血清平均OD值8.1.3.13.2 结果判定强阳性对照、弱阳性对照 PI50% ,阴性对照 PI 50%的条件下,进行判定。被检血清抑制

16、百分比PI50%,判为 SRV 抗体阳性,PI 50% 判为被检血清 SRV 抗体阴性。9 Wester Blot 检测9.1 仪器和设备单孔道可调微量移液器、离心机、蛋白凝胶电泳仪、蛋白转膜仪9.2 SDS 凝胶电泳操作程序9.2.1 准备电泳的玻璃夹层,根据生产厂家的说明安装玻璃板。9.2.2 准备分离胶,配制见附录 B,将溶液注入两块玻璃板的孔隙处,直至距边沿短玻璃 2 cm,再 在其上注入去离子水用于封闭分离胶,室温放置约 20 min,待其完全聚合后,倒出去离子水。9.2.3 吸取 5% 的浓缩胶溶液,注入凝固的分离胶上层至所需高度;立即插入适当的梳子,于室温 放置 20 min 左右,直至 5% 的浓缩胶溶液凝固。

展开阅读全文
相关资源
正为您匹配相似的精品文档
相关搜索

最新文档


当前位置:首页 > 行业资料 > 其它行业文档

电脑版 |金锄头文库版权所有
经营许可证:蜀ICP备13022795号 | 川公网安备 51140202000112号