大肠杆菌培养感受态制备质粒转化及鉴定

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1、大肠杆菌的培养1. LB 培养基配制: (液体培养基) 取 1L 的烧杯,加入适量的一蒸水(1000ml) ,称取胰蛋白胨 10g , 酵母提取物 5g , Nacl 10 g 倒入烧杯中 加入磁子搅拌,至完全溶解 用 NaoH 调 PH=7.0,定容至 1L 分装后高压蒸汽灭菌 (固体培养基) 在液体培养基的基础上加入琼脂糖:1L 液体培养基15g 琼脂糖(用水先溶解) 在电炉子上边加热边搅拌至煮沸溶解 分装后高压灭菌 抗生素的加入温度要求:高压灭菌后,将融化的 LB 固体培养基置与 55的水浴中,待培 养基温度降到 55时(手可触摸)加入抗生素,以免温度过高导致抗生素失效,并充分摇 匀。

2、注意事项: 电炉子温度不要太高,烧杯直接加热时电炉子上要加石棉网 高压灭菌时,瓶盖上要插上针头,防止灭菌时瓶盖喷出 2. 倒平板: 培养皿要提前进行灭菌、烘干,在超净工作台里,打开酒精灯,在酒精灯的火焰旁进行操 作,倒完后做好标记 3. 接种(平板划线分离法): 接种环挑取大肠杆菌进行接种:图式:注意:每次划线前接种环都要灼烧灭菌,再冷却。 4. 37恒温培养箱培养: 接种好的培养皿正置 15 分钟,然后倒置放入培养箱过夜培养 倒置培养原因:恒温培养时,培养基中的水分会以水蒸汽的形式蒸发,倒置培养皿则会使 水蒸汽凝结成水滴留在盖上。如果正方,则水分形成的水滴会落入培养基表面并扩散开。 如果培养

3、皿中已形成菌落,则会导致菌随水扩散,很难再分成单菌落,达不到分离目的。大肠杆菌感受态的制备及转化感受态感受态:细菌处于容易吸收外源 DNA 的状态叫感受态。 转化转化:是指质粒 DNA 或以它为载体构建的重组子导入细菌的过程。 一、制备:步骤从大肠杆菌 DH5 的培养平板上挑取一个单菌落接于 2mL LB 液体培养基的试管中,37振荡培养过夜。 以 1%的接种量将以上过夜培养物接种于液体培养基中 37振荡培养 23h 将菌液转移到 50mL 离心管中,冰上放置 10min 4000rpm,离心 10min 回收细胞 倒出培养液,将管倒置 1min 以便培养液流尽 用冰冷的 0.1mol/L C

4、aCl 2 10mL,悬浮沉淀 立即放在冰上保温 30min 4,4000rpm,离心 10min,回收细胞 用冰冷的 0.1mol/L CaCl 2 2mL 悬浮细胞(务必放冰上) 分装细胞,每 200l 一份。此细胞为感受态细胞。二、转化:步骤: 在 200l 新鲜配制的感受态细胞中加入质粒 DNA2l(50ng), 混匀同时做以下对照管 (受体菌对照:200l 感受态细菌+2l 无菌水 质粒对照:200l 0.1mol/L CaCl 2 溶液+2l 质粒) 冰上放置 30min 将管放到 42循环水浴热冲击 90s 取出,迅速冰浴 2min 每管加 800l LB 液体培养基,37慢摇复

5、苏 1h 取 50l 已转化的感受态细胞或对照样品, 各分别涂在含有或不含有氨苄青霉素的培养皿中 待吸干菌液后,倒置培养皿,于 37培养过夜 次日在含氨苄青霉素的培养皿上长的菌落即为含有质粒的大肠杆菌(即转化成功)质粒 DNA 的提取1.溶液: 溶液:50 mmol/L 葡萄糖 、25 mmol/L Tris (pH=8.0) 、10 mmol/L EDTA 溶液:0.4mol/L NaoH、2% SDS 溶液:5mol/L 醋酸钾(KAc):60ml、冰醋酸:11.5 ml、H2O: 28.5 ml 2.步骤: 在锥形瓶中加入 100mL 液体培养基,向培养基中加入 100ul 氨苄青霉素

6、挑取单菌落接种于锥形瓶中,37培养过夜 次日,取 1.5ml 培养物于 EP 管中,4000rpm 离心 2min 吸去培养液,使细菌沉淀尽可能干燥 将细菌沉淀悬浮于 100ul 溶液中,充分混匀,室温放置 10min 加 200ul 溶液(新鲜配制) ,盖紧管皿,轻柔混匀混合物,冰上放置 5min 加入 150ul 预冷的溶液,盖紧管口,颠倒数次使混匀,冰上放置 15min 12000rpm 离心 15min,将上清转移至另一 EP 管 向上清中加入等体积的氯仿(去蛋白) ,反复混匀, 12000rpm 离心 5min,将上清转移至另一 EP 管 向上清中加入 2 倍体积的无水乙醇,混匀后,

7、室温放置 510min, 12000rpm 离心 5min,倒去上清液,把 EP 管倒扣在吸水纸上,吸干液体 用 1ml70%乙醇洗涤质粒 DNA 沉淀,震荡并离心, 倒去上清液,真空抽干或空气中干燥 加入 20ul TE 缓冲液或无菌水,溶解 DNA,-20保存 3.注意事项: 在混匀时,不能剧烈震荡,动作一定要轻柔。 氯仿抽提完,转移上清时,一定不要吸到中间蛋白层,宁少勿多。质粒 DNA 的鉴定琼脂糖凝胶电泳检测 DNA步骤: 1.制备琼脂糖凝胶电泳:在锥形瓶中加入 45 ml 0.5TBE 缓冲液,称取 0.45g 琼脂糖放入 锥形瓶中,置微波炉中 2min,中火加热至完全熔化,取出摇匀

8、,则为 1%的琼脂糖凝胶。 2.待琼脂糖凝胶冷却至 70时,加入 10ul 溴化乙锭(Eb) 3.取有机玻璃内槽,洗净晾干,用橡皮膏将有机玻璃内槽的两端边缘封好,一定要封严, 放好梳子 4.将冷到 60琼脂糖凝胶液,缓缓倒入有机玻璃内槽,直至有机玻璃板上形成一层均匀的 胶面(注意不要形成气泡) 5.目视凝胶凝固后,再过半个小时,取出梳子,取下橡皮膏,放在电泳槽内,加入 0.5TBE 缓冲液至电泳槽中,加至液面刚没过胶板约 1mm 6.加样:将 buffer(染料)与被测 DNA 混合,用移液枪将样品加入到梳子孔中,对照滴在 最下面的孔 7.电泳:接通电源,调节电压 120V、电流 80mA 8

9、.观察结果:在将胶板放在紫外灯下,连接电脑,拍照。氨苄青霉素氨苄青霉素(ampicillin) (100mg/ml) 溶解 1g 氨苄青霉素钠盐于足量的水中,最后定容至 10ml。分装成小份于-20贮存。常以 25ug/ml50ug/ml 的终浓度添加于生长培养基。 羧苄青霉素羧苄青霉素(carbenicillin) (50mg/ml) 溶解 0.5g 羧苄青霉素二钠盐于足量的水中,最后定容至 10ml。分装成小份于-20贮存。 常以 25ug/ml50ug/ml 的终浓度添加于生长培养基。 甲氧西林甲氧西林(methicillin) (100mg/ml) 溶解 1g 甲氧西林钠于足量的水中,

10、最后定容至 10ml。分装成小份于-20贮存。常以 37.5ug/ml 终浓度与 100ug/ml 氨苄青霉素一起添加于生长培养基。 卡那霉素卡那霉素(kanamycin) (10mg/ml) 溶解 100mg 卡那霉素于足量的水中,最后定容至 10ml。分装成小份于-20贮存。常以 10ug/ml50ug/ml 的终浓度添加于生长培养基。 氯霉素氯霉素(chloramphenicol) (25mg/ml) 溶解 250mg 氯霉素足量的无水乙醇中,最后定容至 10ml。分装成小份于-20贮存。常以 12.5ug/ml25ug/ml 的终浓度添加于生长培养基。 链霉素链霉素(streptomy

11、cin) (50mg/ml) 溶解 0.5g 链霉素硫酸盐于足量的无水乙醇中,最后定容至 10ml。分装成小份于-20贮存。 常以 10ug/ml50ug/ml 的终浓度添加于生长培养基。 萘啶酮酸萘啶酮酸(nalidixic acid) (5mg/ml) 溶解 50mg 萘啶酮酸钠盐于足量的水中,最后定容至 10ml。分装成小份于-20贮存。常以 15ug/ml 的终浓度添加于生长培养基。 四环素四环素(tetracyyline) (10mg/ml) 溶解 100mg 四环素盐酸盐于足量的水中,或者将无碱的四环素溶于无水乙醇,定容至 10ml。分装成小份用铝箔包裹装液管以免溶液见光,于-20贮存。常以 10ug/ml50ug/ml 的终浓度添加于生长培养基。

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