大鼠脊髓损伤BBB评分中文版

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1、Western blot 试验操作步骤一、 蛋白样品制备1 用细胞刮刀将细胞刮下(不要将培养基倒掉) ,用吸管将其吸至离心管中2 用 4预冷的 PBS 1ml 冲洗培养瓶 2 次收集入上述离心管中3 1000rpm,离心 10min4 倒掉上清,沉淀用 1ml PBS 重悬,转入 EP 管中,再加 1ml PBS 冲洗离心管壁上残留的细胞转入 EP 管中 5 4,4000rpm ,离心 5min6 倒掉上清液(用抢把残余上清吸干净)7 配制裂解液,计算所需用量,每个 EP 管中加入 100ul 裂解液 (10mg 组织/100ul)若有 4 管(4 组) ,配制 400ul 裂解液:PMSF

2、储备液浓度 100mM,用 RIPA 稀释至 1Mm. 【单去污剂裂解液(PMSF): 1mol/L TrisHCl(pH8.0 )2.5ml; NaCl 0.438gTritonX-100 0.5ml ; 蒸馏水至 50ml; 混匀后 4保存】8 4 裂解 30-45min,每 5min 振荡一次 9 4 14000g 离心 5min,取上清(移入 1.5ml 的 EP 管中) 。10 蛋白定量(常用 BCA 法,参见蛋白定量试剂盒使用说明)每管蛋白一致,分装约 20ul/管左右(加入 5buffer 并用 RIPA 稀释成 1) 11 将蛋白样 100,变性 5min, ,-80(or -

3、20)保存。二、SDS-PAGE 的配制:1 试剂及配制:(1)30% 丙烯酰胺:丙烯酰胺 29g,N,N-亚甲基双丙烯酰胺 1g,去离子水至 100ml,过滤,避光,4贮存。(2)1. 5mmol/L Tris 溶液(PH8.8):称取 18.15gTris 碱(分析纯)加适量的超纯水溶解,用浓盐酸(分析纯 )调 pH 值至 8.8,加超纯水定容至 100 ml,室温储存。(3)1.0mmol/LTris 溶液(pH6.8):称取 12.1gTris 碱(分析纯)加适量的超纯水溶解,用浓盐酸(分析纯 )调 pH 值至 6.8,加超纯水定容至 100 ml,室温储存。(4)10%SDS :1g

4、 SDS 加入 10ml 去离子水,室温贮存。(5)10% 过硫酸铵溶液:0.1g 过硫酸铵加入 1ml 水,4保存,现用现配。(6)TEMED (可购买成品)(7)5电泳缓冲液(Tank buffer):称取 15.14g Tris 碱(分析纯),72.1g 甘氨酸(分析纯),5g SDS(分析纯 ),加适量的超纯水溶解,pH 值应该在 8.3 左右,加超纯水定容 1000ml,室温储存。(8)分离胶、浓缩胶液配方:(两个用小烧杯,用完立即刷)总体积 5ml 2ml 5ml浓度 12%分离胶 5%浓缩胶 10%分离胶水(ml) 1.6 1.4 1.930%丙烯酰胺(ml) 2.0 0.33

5、1.71.5mmol/L Tris 溶液(pH8.8)(ml)1.3 1.31.0mmol/L Tris 溶液(pH6.8)(ml) 0.25 10%SDS(ml)(透明) 0.05 0.02 0.0510%过硫酸铵溶液(ml) 0.05 0.02 0.05TEMED(ml)(铺胶前加) 0.002 0.002 0.0022. 制胶程序:(小分子量)(1) 装板(小玻璃朝外)(2) 配制分离胶,加 TEMED 后,充分混匀,立即注入玻璃板间隙,从一边开始,并为浓缩胶留足够空间(梳齿长约 1cm) 。立即覆盖蒸馏水至顶部,天冷可放入烤箱 15-20 分钟,待分离胶聚合后,用滤纸吸去上面的水层,再

6、灌入浓缩胶(配方见上表) ,插入样品梳,避免气泡出现。(3) 待聚合后(约 20 分钟) ,拔出样品梳,将电极缓冲液注满电泳槽的前后槽,在加样孔中加入 10-20ul 样品(蛋白量 20ug 左右) 。左侧第一孔加 maker,样品不够可用 laoding buffer。电泳:接通电源,浓缩胶 80 伏约半小时,此后分离胶 120/160 伏继续 1 小时左右。三、转膜:1、转移缓冲液的配制:(先用先配)试剂 用量甘氨酸 14.413gTris 碱 3.0285g无水甲醇 40-200ml(蛋白量 150 以上加40)水 至 10002、 转膜程序:(1)剪 4 张滤纸,和一张 PVDF 膜,

7、大小与凝胶相同(滤纸要比胶小,膜稍大以防转膜时发生短路) 。在膜的一角做一记号(或剪角) 。(2)将剪好的膜依次序浸入 100%甲醇(10 秒)去离子水(5min)转移缓冲液(大于10min) 。(3) 滤纸和海绵(纤维)垫浸入转移缓冲液中(大于 10min)(4) 剥胶,并将凝胶裁成合适大小,切角以做记号。(5) 安装转膜装置:从正极(红色)负极(黑色)依次为:白色边盒多孔垫片(12张)滤纸PVDF 膜凝胶(12 张)滤纸多孔垫片黑色边盒。扣上吊扣后插进转膜槽中。转膜槽内加冰盒,防止电泳时过热。(6)接通电源:恒流电转移两个小时,电流一般是 100mA(视蛋白大小而定) 。(7)电泳结束后,

8、关闭电源,将膜取出。四、封闭及免疫反应(一)试剂的配制:15x TBS:( PH 7.5)用时稀释 5 倍试剂 1000ml 用量Tris-base 6.05gNaCl 43.83g去离子水 至 1000ml21x TBST :1x TBS+0.05%Tween-20试剂 1000ml 用量Tween-20 0.5ml1x TBS 1000ml3 Blocking buffer:1x TBST+5% Dry Milk试剂 100ml 用量Dry Milk 5 g1x TBST 100ml(二) 、免疫反应程序:1. 取膜(平头镊子,玻璃平皿) ,放入 10ml Blocking buffer(

9、封闭缓冲液) ,室温轻摇 2h,或 4过夜。2. 一抗孵育,用 TBST 配制,1:1000(比例须看说明书,装入塑封袋中赶净气泡后用封口机封口) ,室温摇床上孵育 1h 后 4过夜。用 TBST 室温洗膜 10min3 次3. 二抗孵育。用 Tbst 稀释,1:2000(比例须看说明书,方法同上) ,室温轻摇 45min-2h。4. 用 TBST 洗膜 10min3 次。五、显影:1 试剂(1) 超敏发光液(ECL) (A、B 液等比混合)(2) 显影液:显影粉(按说明书配制)(3) 定影液:定影粉(按说明书配制)2 显影程序(1) 发光液工作液的配制:等体积混合适量 A 液(200ul)和

10、 B 液(200ul),视膜大小而定,直接在保鲜膜上混合。(2) 显色反应:将膜取出,用吸水纸略吸去过多的液体(切勿接触膜的蛋白面) ,然后置于保鲜膜上,浸入并与发光液均匀充分地接触。(3) 压片检测:将膜固定于暗盒内(蛋白面朝胶片) 。暗盒内放入胶片,压片曝光。 (压片时间要摸索,15s-过夜)(4) 显影:胶片放入显影液,观察显影情况。 (时间视显影情况而定)(5) 定影:胶片放入定影液,2-10min。流水冲洗,干燥保存六、ECL 膜再生1 试剂膜再生液:(500ml)SDS:10g ; Tris:3.62g (Tris 碱) ;H2O:400ml 调 PH 值 6.7;定容至 500m

11、l;加 250l-巯基乙醇。2 膜再生程序:(1) TBST 洗膜 10min3 次(2) 用时将膜浸在膜再生液中,60水浴 30 min(摇床)(3) TBST 洗膜 10min3 次 (4) 封闭液封闭BBB 法脊髓损伤的行为学评分 评估大鼠后肢运动功能的恢复情况。将动物放置于平台上,观察记录其后肢的行走及肢体活动。评分分三部分第一部分为 0 一 7 分,评判动物后肢各关节活动第二部分为 8 一 13 分,评判后肢的步态及协调功能第三部分为 14 一 21 分,评判运动中爪的精细动作,三项满分为 21 分.定义:将动物放入一开口盆中,轻敲盆壁,使其爬行,观察动物的臀、膝、踝关节行走、躯干运

12、动及其协调情况。0 无可观察到的后肢运动1 1 或 2 个后肢关节轻度活动,一般为髋关节/膝关节。2 1 个后肢关节大幅运动和另一关节轻度活动3 2 个后肢关节大幅运动4 所有 3 个后肢关节轻度活动5 2 个后肢关节轻度运动和第 3 个关节大幅运动6 2 个后肢关节大幅运动,第 3 个关节轻度活动7 所有 3 个后肢关节大幅运动8 不负重摆动,或足底着地,但不负重9 仅站立的时候足底负重或偶尔/频繁/持续以足背负重步行,无足底负重步行10 偶见负重步行,但前、后肢不协调11 由频繁到持续负重步行,但无前、后肢协调12 由频繁到持续负重步行,偶见前、后肢协调13 由频繁到持续负重步行,频繁前、后肢协调14 持续协调足底步行,优势爪在刚触地和抬起时旋转15 频繁足底步行,持续前、后肢协调,偶尔足背侧步行16 持续协调足底步态,当前肢向前时无或偶有伸趾,优势爪刚触地时平行17 持续协调足底步态,频繁伸趾,优势爪触地时平行,抬起时旋转18 持续协调足底步态,频繁伸趾,优势爪在触地及抬起时均平行19 持续协调足底步态,持续伸趾,优势爪在触地及抬起时均平行20 基本内容同 18,尾在部分或全部观察期中下垂21 基本内容同 18,尾持续上翘,但躯体不稳

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