质粒的提取和纯化ppt课件

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1、.,质粒的提取和纯化,.,内 容,一.质粒的概念和提取原理 二.碱裂解法的实验操作和原理 三.煮沸法快速提取质粒的实验操作和原理 四.实验室使用的方法 五.质粒纯化后的检测,.,一.质粒的概念和提取原理,质粒(Plasmid)是一种染色体外的稳定遗传因子,大小从1-200kb不等,为双链、闭环的DNA分子,并以超螺旋状态存在于宿主细胞中。质粒主要发现于细菌、放线菌和真菌细胞中,它具有自主复制和转录能力,能在子代细胞中保持恒定的拷贝数,并表达所携带的遗传信息。质粒的复制和转录要依赖于宿主细胞编码的某些酶和蛋白质,如离开宿主细胞则不能存活,而宿主即使没有它们也可以正常存活 .,.,一.质粒的概念和

2、提取原理,质粒在细胞内的复制一般有两种类型: 紧密控制型(Stringent control) 松驰控制型(Relaxed control),.,一.质粒的概念和提取原理,在pH 12.0 12.6碱性环境中,细菌的线性大分子量染色体DNA变性分开,而共价闭环的质粒DNA虽然变性但仍处于拓扑缠绕状态。将pH调至中性并有高盐存在及低温的条件下,大部分染色体DNA、大分子量的RNA和蛋白质在去污剂SDS的作用下形成沉淀,而质粒DNA仍然为可溶状态。通过离心,可除去大部分细胞碎片、染色体DNA、RNA及蛋白质,质粒DNA尚在上清中,然后用酚、氯仿抽提进一步纯化质粒DNA。,.,实验中使用的三个溶液,

3、1,溶液: 葡萄糖使悬浮后的大肠杆菌不会快速沉积到管子的底部. Tris.Cl (pH8.0)提供反应的最佳环境. EDTA (pH8.0) Ca2+和Mg2+等二价金属离子的螯合剂,抑制DNase(脱氧核糖核酸酶)的活性和抑制微生物生长.,.,实验中使用的三个溶液,2,溶液:NaOH (临用前用10mol/L NaOH 母液稀释) 1 SDS 注:要新从浓NaOH稀释制备NaOH,是为了保证NaOH没有吸收空气中的CO2而减弱了碱性. NaOH细胞膜发生了从bilayer(双层膜)结构向micelle(微囊)结构的相变化,瞬间就溶解. 当然SDS也是碱性的,但是很弱,只能抽提得到少量质粒 .

4、,.,实验中使用的三个溶液,3,溶液: KAc 冰醋酸 ddH2O 注:冰醋酸的作用是为了中和过量的NaOH. KAc是提供K+和SDS反应,取代Na离子,形成十二烷基硫酸钾 (PDS),而PDS是难溶于水的. SDS易和蛋白质结合,平均两个氨基酸上结合一个SDS分子,钾钠离子置换所产生的大量沉淀自然就将绝大部分蛋白质沉淀了 ,同时长长的基因组DNA也一起被共沉淀了.但是SDS并不与DNA分子结合 .,.,二,碱裂解法的操作步骤,1,取培养至对数生长后期的含质粒的细菌培养液,高速离心,弃上清,将离心管倒置使上清液全部流尽。 2, 加入溶液I,充分悬浮菌体细胞。 3,加入新配制的溶液II, 盖紧

5、瓶盖,缓缓地颠倒离心管数次,以充分混匀内容物,冰浴5分钟。 4,加用冰预冷的溶液III, 摇动离心管数次以混匀内容物,冰上放置15分钟,此时应形成白色絮状沉淀。5,4下离心15分钟。,.,二,碱裂解法的操作步骤,6,取上清液,加入 RNA酶A, 37水浴20分钟。 7,加入等体积的饱和酚/氯仿,振荡混匀,4下高速离心10分钟。 8,取上层水相, 加入等体积氯仿,振荡混匀,4下高速离心10分钟。9,取上层水相,加入2倍体积的无水乙醇 ,室温放置几分钟 ,离心。 10,4下高速离心15分钟, 沉淀用数ml 70%冰冷乙醇洗涤,4下高速离心5分钟。 11,吸除上清液,将管倒置于卫生纸上使液体流尽,真

6、空干燥10分钟或室温干燥 。 12,得到的质粒样品一般用TE缓冲液或者ddH2O进行溶解.,.,注意的事项,一,在加溶液后:.时间不能过长,因为在这样的碱性条件下基因组DNA片断会慢慢断裂;.必须温柔混合,不然基因组DNA也会断裂。 二,加入的酚必须要用氯仿和乙醇洗涤干净,否则对后面的实验有影响. 三,沉淀DNA也可用异丙醇(一般使用等体积),且沉淀完全,速度快,但常把盐沉淀下来,所以多数还是用乙醇。 四,提取质粒DNA过程中除去蛋白很重要,采用酚/氯仿去除蛋白效果较单独用酚或氯仿好,要将蛋白尽量除干净需多次抽提 .,.,三,煮沸法快速提取质粒的操作步骤,(1) 将 2ml 含相应抗生素的 L

7、B 培养基加入到容量为 15ml 的试管中,接种一单菌落,用棉塞封口,在 37 剧烈震荡( 250rpm )培养过夜。 (2) 将 1.5ml 培养物转入离心管中,在 4 条件下离心 30 秒。 (3) 弃上清液,用滤纸吸干离心管中的液体培养基,将细菌沉淀物悬浮于 200 m l STET 缓冲液( 8% 蔗糖, 0.5%Triton, 50mmol/L EDTA,10mmol/L Tris ) ,用涡旋混合器充分混匀。 (4) 加入 4 m l 新鲜配制的溶菌酶液,混匀,置室温下 5min 。 (5) 用漂子架住离心管,置于沸水浴中,精确记时 45 秒,取出后立刻离心 10min 。,.,三

8、,煮沸法快速提取质粒的操作步骤,(6) 用无菌牙签挑取离心管中的沉淀物弃去,离心管的上清液中加入 8 m l 5%CTAB(十六烷基三甲基溴化氨) ,用混合器混匀后,高速离心 5min ,弃上清液,用滤纸吸干离心管中的液体。 (7) 加入 1.2M 氯化钠 300 m l ,充分溶解沉淀物,再加入 750 m l 的冷乙醇,充分混匀后,离心 15min ,弃上清液。 (8) 取 1ml 70% 冷乙醇,缓慢淋洗离心管内壁,离心 5min 。弃上清液,用滤纸吸干管壁上的液体,置室温中使核酸沉淀自然干燥 5-10min 。 ( 9 ) 沉淀物溶于 50 m l TE 缓冲液中, 混合器混匀 。 (

9、10) 即成质粒制备液,制备的质粒供下一步实验使用.,.,四,实验室使用的操作步骤,1,取1.5ml含细菌的培养液,离心,弃上清,将离心管倒置使上清液全部流尽。 2,加入溶液I,充分悬浮菌体细胞。 3,加入新配制的溶液II, 盖紧瓶盖,缓缓地颠倒离心管数次,以充分混匀内容物,冰浴5分钟。 4,加用冰预冷的溶液III, 摇动离心管数次以混匀内容物,冰上放置15分钟,此时应形成白色絮状沉淀。 5,4下离心15分钟。,.,四,实验室使用的操作步骤,6,取上清液加新的离心管中. 7,加入纯化树脂,混匀,放置10min. 8,将溶液转移到离心纯化柱中,高速离心. 9,倒掉下管中的溶液,再加80%异丙醇,洗涤两次,每次离心30s,再干甩一次,20min. 10,将离心纯化柱内管取出,放入新的离心管中,加入30l的ddH2O 洗涤,静置10min,高速离心5min. 11.离心管中即得到溶于ddH2O的质粒.,.,五,质粒纯化后的检测,超螺旋 开环 复制中间体,可能会出现的RNA带,注:碱法抽提得到质粒样品中不含线性DNA.,

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