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1、质粒DNA勺小量提取及DN倔脂糖凝胶电泳一、前言质粒质粒是附加到细胞中的非细胞的染色体或核区 DNA原有的能够 白主复制的较小的DNA分子（即细胞附殖粒、又胞附殖粒）。大部分 的质粒虽然都是环状构型，它存在于许多细菌以及酵母菌等生物（多为原核生物）中，乃至于植物的线粒体等胞器中。然而， 1984年， 在 Streptomyces coelicoler（天蓝色链霉菌）等放线菌 以及在 Borrelia hermsii（赫氏蝉疏螺旋体）等原核生物中，又相继发现线形质 粒。天然质粒的DNA长度从数千碱基对至数十万碱基对都有。质粒 天然存在于这些生物里面，有时候一个细胞里面可以同时有一种乃至 于数种的
2、质粒同时存在。质粒的套数在细胞里从单一到数千都有可能。 有时有些质粒含有某种抗药基因（如大肠杆菌中就有含有抗四环素基 因的质粒）。有一些质粒携带的基因则可以赋予细胞额外的生理代谢 能力，乃至于在一些细菌中提周它的致病力。一般来说，质粒的存在 与否对宿主细胞生存没有决定性的作用。 它是基因工程最常见的运载 体。质粒在细胞内的复制一般有两种类型：紧密控制型和松弛控制型。 前者只在细胞周期的一定阶段进行复制， 当染色体不复制时，它也不 能复制，通常每个细胞内只含有一个或几个质粒分子， 如F因子。后 者的质粒在整个细胞周期中随时可以复制， 在每个细胞中有许多拷贝， 一般在20个以上，如Col E1质粒
3、。在使用蛋白质合成抑制剂-氯霉 素时，细胞内蛋白质合成、染色体DNA复制和细胞分裂均受到抑制， 紧密型质粒复制停止，而松弛型质粒继续复制，质粒拷贝数可由原来20多个扩增至1000-3000个，此时质粒DNA占总DNA的含量可 由原来的2%增加至40-50% 。把一个有用的目的DNA片段通过重组DNA技术，送进受体细 胞中去进行繁殖和表达的工具叫载体。 细菌质粒是重组DNA技术中 常用的载体。质粒分子本身是含有复制功能的遗传结构。 质粒还带有 某些遗传信息，所以会赋予宿主细胞一些遗传性状。 其白我复制能力 及所携带的遗传信息在重组 DNA操作，如扩增、筛选过程中都是极 为有用的。质粒载体是在天然
4、质粒的基础上为适应实验室操作而进行人工构建的。与天然质粒相比，质粒载体通常带有一个或一个以上的选择 性标记基因（如抗生素抗性基因）和一个人工合成的含有多个限制性 内切酶识别位点的多克隆位点序列， 并去掉了大部分非必需序列，使 分子量尽可能减少，以便于基因工程操作。大多质粒载体带有一些多 用途的辅助序列，这些用途包括通过组织化学方法肉眼鉴定重组克隆、 产生用于序列测定的单链 DNA、体外转录外源DNA序列、鉴定片 段的插入方向、外源基因的大量表达等。一个理想的克隆载体大致应 有下列一些特性：分子量小、多拷贝、松弛控制型：具有多种常用 的限制性内切酶的单切点；能插入较大的外源 DNA片段;具有两个
5、以上的遗传标记物，便于鉴定和筛选。对宿主细胞无害。常用的质粒载体大小一般在1kb至10kb之间，如PBR322、PUC系列、PGEM 系列和 pBluescript（简称 pBS）等。质粒的不兼容性利用同一复制系统的不同质粒不能在同一宿主细胞中共同存在， 当两种质粒同时导入同一细胞时，它们在复制及随后分配到子细胞的 过程中彼此竞争，在一些细胞中，一种质粒占优势，而在另一些细胞 中另一种质粒却占上风。当细胞生长几代后，占少数的质粒将会丢失， 因而在细胞后代中只有两种质粒的一种， 这种现象称质粒的不相容性。琼脂糖凝胶从琼脂中除去带电荷的琼脂胶后， 剩下的不含磺酸基团、愈酸基 团等带电荷基团的中性部
6、分，结构是链状的聚半乳糖，易溶于沸水， 冷却后可依靠糖基间的氢键引力形成网状结构的凝胶。 凝胶的网孔大 小和凝胶的机械强度取决于琼脂糖浓度。 因此琼脂糖凝胶可作为分子 筛，常用于凝胶层析和电泳。 从琼脂中除去带电荷的琼脂胶后，剩 下的不含磺酸基团、愈酸基团等带电荷基团的中性部分， 结构是链状 的聚半乳糖，易溶于沸水，冷却后可依靠糖基间的氢键引力形成网状 结构的凝胶。凝胶的网孔大小和凝胶的机械强度取决于琼脂糖浓度。因此琼脂糖凝胶可作为分子筛，常用于凝胶层析和电泳。琼脂糖凝胶电泳琼脂糖凝胶电泳是用琼脂糖作支持介质的一种电泳方法。其分析原理与其他支持物电泳最主要区别是 ：它兼有”分子筛和”电泳”的双
7、重作用琼脂糖凝胶具有网络结构，物质分子通过时会受到阻力，大分子 物质在涌动时受到的阻力大，因此在凝胶电泳中，带电颗粒的分离不 仅取决于净电荷的性质和数量，而且还取决于分子大小，这就大大提 高了分辨能力。但由于其孔径相比于蛋白质太小，对大多数蛋白质来 说其分子筛效应微不足道，现广泛应用于核酸的研究中。蛋白质和核酸会根据pH不同带有不同电荷，在电场中受力大小 不同，因此跑的速度不同，根据这个原理可将其分开。电泳缓冲液的 pH在69之间，离子强度0.020.05为最适。常用1%的琼脂糖作 为电泳支持物。琼脂糖凝胶约可区分相差100bp的DNA片段，其分辨率虽比聚丙烯酰胺凝胶低，但它制备容易，分离范围
8、广。普通琼 脂糖凝胶分离DNA的范围为0.2-20kb ,利用脉冲电泳，可分离高 达10八7bp 的DNA片段。DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时有电荷效应和分子筛效应。DNA分子在高于等电点的pH溶液中带负电荷，在电场中向正极移 动。由于糖-磷酸骨架在结构上的重复性质，相同数量的双链DNA几乎具有等量的净电荷，因此它们能以同样的速率向正极方向移动。二、实验目的1. 学习和掌握碱裂解法提取质粒 DNA2. 学习和掌握琼脂糖凝胶电泳的原理和基本操作。三、实验原理1. 质粒DNA的小量提取碱裂解法是根据共价闭合环状质粒 DNA与线性染色体DNA的 变性与复性的差异达到分离的目的。在强碱性条件下，染色体
9、 DNA的氢键断裂，双螺旋结构解开而 变性，质粒DNA大部分氢键也断裂，但超螺旋共价闭合环状的两条 互补链不会完全分离，彼此互相盘绕，仍会紧密地结合在一起。当将 pH调到中性并有高浓度盐存在时，变性质粒 DNA又回复到原来的 结构保存在溶液中，而染色体 DNA不能复性，相互缠绕形成不溶性 网状结构。通过离心，染色体 DNA与不稳定的大分子 DNA,蛋白 质-SDS复合物等一起沉淀下来而被除去。提取的质粒DNA再用酚、 氯仿抽提进一步纯化。2. DNA琼脂糖凝胶电泳琼脂糖凝胶电泳是最常用的鉴定 DNA的方法，它简便易行，只 需少量DNA。琼脂糖是一种天然聚合长链状分子，可以形成具有刚性的滤孔，
10、凝胶孔径的大小决定于琼脂糖的浓度。DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时，有电荷效应与分子筛效应。DNA分观察琼脂糖凝胶中 DNA的最简便方法是利用荧光染料漠乙锭(EB)染色，EB在紫外灯照射下，发红色荧光，本实验使用Goldview四、实验器材和材料试剂1. 实验材料菌种：含质粒PET28a的大肠杆菌2. 实验试剂：(1) 溶液I:50mmol/L 葡萄糖溶液25mmol/L Tris-Cl (pH8.0)10mmol/L EDTA (pH8.0)(2) 溶液 II: 0.4mol/L NaOH, 2%SDS用前两者等体积混合，需新鲜配制(3) 溶液 III:3mol/L 的乙酸钾 (pH4.8 )
11、3mol/L 乙酸钾 60ml冰乙酸11.5ml水28.5ml(4) 酚/氯仿试剂：V (酚)：V (氯仿，含1/24异戊醇)=1:1(5) TE缓冲液10mmol/L Tris-Cl (pH7.4-8.0)1mmol/L EDTA (pH8.0)(6) LB培养基蛋白腺 10g酵母浸出粉5gNaCl 10g溶解在1L水中，调pH至7.2,121 C高压蒸汽灭菌20min(7) 氨节青霉素(Amp ):使用浓度为50-100ug/ml(8) pH8.0 TAE 缓冲液(9) 凝胶上样缓冲液：0.2%漠酚蓝，50%蔗糖(10) 琼脂糖(11) 1mg/ml EB 溶液(12) Marker(13
12、) PCR扩增特异DNA片段3.实验器材：(1) Eppendorf 管(8)微波炉(2)移液器(9)水平仪(3)怛温培养箱(10) 一次性手套(4)低温局速离心机(11)锥形瓶(5)涡旋混合器(12)量筒(6)水平电泳槽(13) tip(7)紫外检测仪、实验操作质粒DNA的小量提取1 .菌种培养将含PET28a的大肠杆菌接种于LB (含Amp )中，37 C振荡培 养过夜。2 .质粒提取(1) 取 1.5ml 培养液倒入 Eppendorf 管中， 4 C ,8000rpm,离心5min。(2) 弃上清，使细胞沉淀尽可能干燥。(3) 将菌体沉淀悬浮于100ul溶液I中，用涡旋振荡器振荡1mi
13、n , 置冰浴10min 。(4) 加200ul溶液II,盖紧管口，快速来回颠倒 3次，使内容 物充分混合，不要振荡，至冰浴中 3min。(5) 加150ul溶液III (冰上预冷)，盖紧管口，颠倒数次并轻 轻振荡混匀，冰浴5min。(6) 4 C, 12000rpm ,离心5min ,将上清液移 入另一 Eppendorf 管中。(7) 向上清液中加入等体积酚/氯仿(1:1),用涡旋振荡器振 荡1-2min , 4C, 10000rpm ，离心 2min ,将上清液移入另一 Eppendorf 管中。(8) 加入等体积氯仿，重复上面的操作。(9) 加入1/10体积的2.5mol/L乙酸钠，再
14、加2倍体积的无水 乙醇，混匀后室温放置 5min , 4C, 12000rpm，离心15min ,弃 上清，将Eppendorf管倒扣在吸水纸上，吸干液体。(10) 加1ml70%乙醇振荡漂洗沉淀，4C, 12000rpm ,离 心2min ,弃上清。(11) 将Eppendorf管倒扣在吸水纸上，使乙醇流尽，空气中干燥。(12) 力口 10ulTE缓冲液，-20 C保存。DNA琼脂糖凝胶电泳1. 琼脂糖凝胶的制备称取0.45g琼脂糖，放入锥形瓶中，加入30ml TAE缓冲液，保 鲜膜封口，置微波炉加热至完全澄清透明取出摇匀，琼脂糖的浓度为 1.5%。待琼脂糖凝胶溶液冷却至 50 C，再加入1
15、.5ul goldview , 使其终浓度为0.5ug/毫升。2. 凝胶板的制备用制胶器将紫外透光凝胶盘固定好，采用水平仪调整平衡使凝胶 盘位于同一水平面。将适宜的梳子垂直架在凝胶盘内槽的一端，使梳齿距玻璃板之间尚有0.5-1mm 的距离。将冷到50 C左右的琼脂糖凝胶，缓缓倒入凝胶盘内槽，厚度适 宜(注意不要有气泡)。3. 点样待凝胶凝固后，小心取出梳齿，将凝胶盘放入电泳槽内。加入足 够的TAE电泳缓冲液，使液面略高出凝胶面。取5微升PCR扩增产物，向其中加入1微升的上样缓冲液，混 匀后用移液器将其加入加样孔，记录样品点样次序与点样量。4. 电泳接通电泳槽与电泳仪的电源，调节电压120V，当漠酚蓝染料移动 到距凝胶前沿1-2cm处，停止电泳。5. 观察在紫外灯下观察凝胶，有 DNA处应显出橘红色荧光条带。记录 电泳结果。六、实验结果及分析1. 实验结果:2. 实验结果观察：上图中从最左边 marker开始第6、7为我和与我同组的同学的点样结果。可看出第6个明显条带亮度要低于旁边的多数条带，但第7个条带亮度却与旁边的条带相差不多。 但这两个均存在很严重的拖 带现象七、实验注点事项1. 加入溶液II后快速来回颠倒，不要
