分子生态学实验步骤与原理总结

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1、.专业整理.(一) 基因组DNA提取上海博彩生物科技有限公司:3S DNA Isolation Kit for Environmental Samples V2.2 3S柱离心式环境样品DNA回收试剂盒 V2.2DNA抽提方法使用仪器:灭菌锅,无菌操作台,移液枪,漩涡振荡器,台式离心机,水浴锅,分光光度计或者琼脂糖电泳槽灭菌物品:枪头,1.5ml,2ml离心管一、污泥样品前处理样品在处理前首先要混匀,使其中的悬浮物质分布均匀。取约l0mL污水样品,加入灭菌离心管,400Orpm、离心20min,收集沉淀,加约4倍体积的TENP buffer(50mMTirs,20mM EDTA,100mM N

2、aCl,0.01g/mL PVP,pHl0),加玻璃珠(d:l mm)充分匀化(解絮凝)。4000rpm,离心20min,弃上清(重复两次,直至上清液较澄清)。加约4倍体积的PBS buffer(8g NaCl、0.2g KCl、1.44g Na2HPO4、0.24g KH2PO4溶于lL水、pH7.4),旋涡混匀,4000rpm,离心20min,收集沉淀(重复两次)二、基因组DNA提取1. 样品准备: 100mg样品用200ul Solution SUS 将样品浸泡、悬浮,使样品软化分散开。2. 加入400ul Solution LYS,300mg石英砂,盖上离心管盖,在漩涡振荡器上高速剧烈

3、振荡,10-30min或更长时间。3. 用台式离心机,12000rpm,室温离心5min。4. 将上清液完全转移到无菌1.5ml离心管中,加入120ul Solution BID,盖上离心管盖,上下颠倒混匀。将溶液用1ml TIP全部转移到3S柱内,柱子放入2ml离心管中,不盖离心管盖,室温放置2min以上。5. 盖上离心管盖,12000rpm,室温离心1min。6. 取下3S柱,弃去离心管中的废液。将柱子放回同一根离心管中,加入600ul Wash Solution,10000rpm,室温离心1min。7. 重复6一次。8. 取下3S柱,弃去离心管中的全部废液。将柱子放回同一根离心管中,10

4、000rpm,室温离心2min,以除去残留的Wash Solution。9. 洗脱:在柱子中央加入100ul TE,将柱子放入新的干净1.5ml离心管中,室温放置2min。12000rpm,室温离心1min。收集管中的液体即为基因组DNA。根据用途,样品可以4或-20保存。为提高洗脱效率,可以将TE预热到37-55。如果样品中基因组DNA含量很低,用30ul TE洗脱可以提高洗脱液的样品浓度,但产率有所下降。重复该洗脱步骤一次,可以提高产率20%左右。三、提取DNA的质量检测(1)DNA纯度和浓度检测用紫外分光光度计测定DNA样品在波长230,260,280nm处的吸光光度值。DNA纯度的定性

5、检测:通过A260/A280及A260/A230的比值可以检测所提DNA是否纯。通常纯DNA样品A26O/A2801.8,A260/A2302。若A260/A280l.9,可能有RNA污染;若A260/A280l.6,可能有蛋白质污染;若A260/A2302,可能存在酚类等小分子杂质。DNA浓度的计算:浓度(g/mL)=A260*50*稀释倍数;注:1OD值相当于50 g/mL双螺旋DNA。(2)DNA琼脂糖凝胶电泳检测将所得DNA样品进行1%琼脂糖凝胶电泳,电压100V,电泳lh,EB染色后,用紫外凝胶成像系统拍照。 .学习帮手.(二)PCR扩增一、PCR扩增引物采用两组对大多数细菌和古细菌

6、的16S rRNA基因V3区具有特异性的引物对:组合(F34,GC和RS:8)。引物组合的正向引物5端中有一个富含GC的40bp的GC发卡结构。它们各自序列分别为:F341:(5一eCTACGooAooeAGeAo一3),Rsls:(5一ATTACCGCGGCTGCTGG一3,),GC发卡结构(5一CGCCCGCCGCGCGCGGCGGGCGGGGCGGGGGCACGGGGGG一3)。引物组合扩增产物片段长度约为220bp。二、PCR扩增反应体系PCR扩增反应体系,与表3一3相同。加样后立即进行PCR扩增。三、PCR扩增程序PCR扩增程序,与表3一4相同。四、PCR产物电泳检测取5闪PCR产物

7、进行电泳,胶浓度为2.0%,在电压100v条件下电泳lh后检测,经EB染色后用凝胶成像系统观察,保存凝胶图谱。电泳所用Marker为天根生化科技(北京)有限公司生产的nNAM叭e:nLZo00。.专业整理.(三)变性梯度凝胶电泳(DGGE)分析预电泳的作用1.使体系达到反应的条件2.清除过多的变性剂和APS等,保持胶的稳定状态。聚丙烯酰胺凝胶电泳 聚丙烯酰胺凝胶电泳适宜分离鉴定低分子量蛋白质、小于1Kb的DNA片段和DNA序列分 析。其装载的样品量大,回收DNA纯度高。长度仅相差0.2%(即500bp中的1bp)的核苷酸分子即能分离。聚丙烯酰胺凝胶是由丙烯酰胺单体,在催化剂TEMED(N,N,

8、N,N一四甲基乙二胺)和 过硫酸铵的作用下,丙烯酰胺聚合形成长链,聚丙烯酰胺链在交联剂,N,N一亚甲 双丙烯酰胺参与下,聚丙烯胺链与链之间交叉联接而形成凝胶。一、试剂配制(l)50*TAE缓冲液:242g Tris碱,57.1mL冰醋酸,100mL0.5M EDTA(pH8.0),加水至1L。混合均匀后高压灭菌20-30min,室温保存。(2)40%丙烯酰胺/双丙烯酰胺(37.5:1):38.93g丙烯酰胺,1.07g双丙烯酰胺,加水至100mL。(3)O%变性溶液:20mL40%丙烯酰胺/双丙烯酰胺,2mL50*TAE缓冲液,加水至100mL,再分别加入80L APS和5L TEMED。4条

9、件下保存在棕色瓶中。(4)100%变性溶液:2OmL40%丙烯酰胺/双丙烯酰胺,2mL50*TAE缓冲液,40mL甲酰胺,42g尿素,加水至100mL,再分别加入80L APS和5L TEMED。4条件下保存在棕色瓶中,100%变性溶液在使用之前需要预先溶解,把瓶子放进水浴锅中加温并快速搅拌。(5)10%过硫酞胺(APS):lg过硫酰胺加水至10mL。现用现配。(6)对于变性浓度低于100%的溶液,用0%和100%的变性溶液混合配制而成,尿素和甲酰胺含量如下所示:不同浓度的变性溶液尿素、甲酰胺含量成分10%20%30%40%50%60%70%80%90%尿素(g)4.28.412.616.82

10、125.229.433.637.8甲酰胺(ml)4812162024283236二、DGGE胶的制备(l)用无水乙醇清洁制胶用的两块玻璃板,将spacer放在2个玻璃板之间,插入clamp中,将aligment板放入,用螺丝夹子固定,将aligment取出,用手摸底部是否平整,要绝对的平,否则会漏。(2)将软垫放在底座上,玻璃板放在软垫上固定,用水平器调节。(3)配制13.5mL高浓度变性梯度液,加入梯度仪高浓度右槽,打开左槽螺旋,溶液流入左槽,关上螺旋,用吸管将它们吸回右槽内(确保两槽无气泡阻隔)。(4)配制13.5mL低浓度变性梯度液,加入梯度仪低浓度左槽。(5)轻轻打开两槽间的活塞和梯度

11、仪出口开关,并搅拌。将长针头插入玻璃板之间,流速保持在2mL/min左右。(6)胶板灌满后,顶部插入梳子,凝固2小时。三、DGGE凝胶电泳步骤及染色(l)在DGGE槽中加7L左右1*TAE(DGGE专用),使槽中的水至Full和Run的中间位置;加盖,注意长杆进入底部的窟窿中,打开电源,将温度设置到60,打开heat键。(2)当梳子位置的胶凝固好后,将玻璃板固定在黄色的凝胶板架上,如果只有1板胶,注意另一侧也要固定玻璃板(不加spacer),否则漏水。安装好玻璃板后,将凝胶板架(红点在右边)放入水槽中,之后将温度控制器盖在电泳槽上,注意长杆进入底部的窟窿中。打开电源,打开heat键和bump键

12、,开bump键后,水位会下降,降至run与maxmum的中间,水若不够的话,关闭电源,打开温度控制器上方的探望口,加1*TAE补足。(3)温度达到60,立即进样,先关掉所有电源,取下温度控制器,小心地拔掉梳子,用移液枪冲洗侮一个进样孔;进样要缓慢,使样品顺着玻璃板均匀地落入到进样孔中。每一个进样孔加入25L样品。(4)将温度控制器盖在电泳槽上,打开电源,将温度调到60,打开heat键和bump键,运行5min后,在主机上插入红黑电源线,注意红黑线不要颠倒。打开主机电源,将电压调到120V,时间调为5h。(5)电泳结束后,关掉电源,打开盖子,将凝胶板架拿出,控水,卸下玻璃板。将clamp卸下,手

13、抓住spacer,向内侧拧,揭下短玻璃板,胶粘在长玻璃板上。(6)将托盘上平铺张保鲜膜后,将长板和胶放入托盘中银染。银染步骤步骤:时间溶液固定30 min10%冰醋酸、30%乙醇,100 ml敏化2*10 min30%乙醇,100 ml洗涤冲洗30 s,漂洗5*5 min双蒸水银染30 min新鲜配制的0.1%AgNO3,100 ml,使用前加入370 l的福尔马林溶液洗涤冲洗30 s,漂洗1 min,再冲洗30 s双蒸水显影直至显示条带为止,密切观察溶液1:0.2 g硫代硫酸钠于10 ml水中溶液2:2.5 g碳酸钠于100 ml水中将100 l溶液1加入溶液2中,再加350 l的福尔马林溶

14、液终止30 min5.84 g EDTA2Na2H2O以及8 g Glycine于双蒸水中,定容至400 ml(也可用10%的冰醋酸)保存长达数日10%甘油长时间保存干胶自然干燥即可(1) AgNO3母液(20%):将2 g AgNO3溶解于双蒸水中,定容至10 ml,放置于棕色瓶中密闭保存。每次使用时取2 ml母液,稀释至400 ml,再加入福尔马林。(2) 10*Tris EDTA(TE):pH=8.0A100mmol/L Tris-CI(pH=8.0)B10mmol/L EDTA (pH=8.0)CTris-Cl(1 mol/L):用800 ml蒸馏水溶解121.1 gTris碱,加浓盐

15、酸调pH值至所需值。银染原理:银染是一种常用的蛋白质染色方法,具有较高的灵敏度,可以染出SDS-PAGE胶中含量低至0.2ng的蛋白。虽然这是protocol上的说法,但如果操作得当,检测到5ng左右的蛋白应该不成问题。如果搜索银染的protocol,可能会得到许多种说法。为什么这样一种重要的实验手段却得不到统一的应用呢?这可能要从银染本身那复杂而又灵活的原理说起。简单的讲,银染的原理就是将银离子还原,附着在蛋白表面,形成染色。银染所用的银,基本上是基于两种试剂,一种是硝酸银,另一种是Silver diammine。基于硝酸银的应用要多于后者(据说Silver diammine比较费“银子”),现在主要说说基于硝酸银的银染的原理。银离子容易被还原,在PAGE胶上,哪里的银离子先开始被还原,哪里就先开始出现条带。通常由于蛋白质结构上的复杂性,一部分银离子结合在蛋白质之上后会影响更多银离子的结合,所以有蛋白的地方银离子较少,如果不做任何处理,有蛋白的部位将会染色更浅,所以最初的银染是负染。那最初的负

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