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1、病毒感染细胞实验整体流程及原理 目的基因不能直接整合到大多数真核细胞，常用的手段是将目的基因包装成病毒来感染细胞，从而得到表达满足实验需求。1、病毒的种类病毒有很多种，常见的有慢病毒和腺病毒1.1 慢病毒1.1.1 原理慢病毒（Lentivirus）是逆转录病毒的一种。构建的 siRNA / miRNA 慢病毒载体，与化学合成的 siRNA 和基于瞬时表达载体构建的普通 siRNA 载体相比，一方面可以扩增替代瞬时表达载体使用，另一方面，Lentivirus-siRNA 克隆经过慢病毒包装系统包装后，可用于感染依靠传统转染试剂难于转染的细胞系如原代细胞、悬浮细胞和处于非分裂状态的细胞，并且在感
2、染后可以整合到受感染细胞的基因组，进行长时间的稳定表达。1.1.2 特点1） 直接包装成为假病毒颗粒，对分裂和非分裂细胞均有感染作用，适合 RNAi 研究和体内实验中难于转染的细胞 (比如神经元细胞、干细胞或其它原代细胞 )。 2） 可以通过简单方式，在短时间内获得稳定表达特定基因的多种细胞株。3） 可用于基因敲除、基因治疗和转基因动物研究。4） 无需任何转染试剂，操作简便。5） 可以根据客户需要制备多种标记。1.1.3 慢病毒包装简要流程：1） 含有目的基因的慢病毒 RNAi 干扰载体的构建和质粒纯化提取。 2） 慢病毒载体，包装系统共转染病毒包装细胞 293T 等。 3） 培养 48hrs
3、 - 72hrs 左右，收集含有病毒的上清培养液。 4） 病毒的纯化和浓缩。 5） 分装、 - 80 保存。 6） 滴度测定目的基因检定，并出具检测报告。1.2、腺病毒1.2.1 原理腺病毒(Adenovirus，Ad)是一种无包膜的线状双链 DNA 病毒，其复制不依赖于宿主细胞的分裂。有近 50 个血清型，大多数 Ad 载体都是基于血清型 2 和 5，通过转基因的方式取代 E1 和 E3 基因，降低病毒的复制能力。这些重组病毒仅在高水平表达 E1 和 E3 基因的细胞中复制，因此是一种适用于治疗的高效控制系统。1.2.2 特点1） 几乎可以感染所有类型的细胞2） 可以获得复制缺陷型 (E1
4、和 E3 缺失) 的腺病毒3） 病毒滴度高，产生病毒经过浓缩后可以达到 1012 PFU/mL，能有效的进行增殖。4） 腺病毒载体感染宿主的范围比较广，制备容易，操作简单.5） 感染细胞时，不整合到染色体中，不存在激活致癌基因或插入突变等危险，生物安全性高。1.2.3 腺病毒包装简要流程1） 构建表达 siRNA/miRNA 的腺病毒载体2） 采用 PacI 消化纯化的质粒。3） 消化好的腺病毒表达载体转染 293A 细胞，收获细胞以制备病毒粗提液。4） 将病毒粗提液感染 293A 细胞以扩增病毒。5） 分装， -80保存。1.3、慢病毒和腺病毒的比较慢病毒载体系统和腺病毒载体系统比较病毒表达
5、系统 慢病毒表达系统（Lentivirus ） 腺病毒表达系统（Adenovirus）病毒基因组 RNA 病毒 双链 DNA 病毒复制 自主复制 自主复制是否整合 病毒基因组整合于宿主基因组，长时间、稳定表达外源基因病毒基因组游离于宿主基因组外，瞬时表达外源基因感染细胞类型 感染分裂和不分裂细胞，适用于难转染的原代细胞（如神经细胞）及体内实验感染分裂和不分裂细胞表达风度 中水平表达 高水平表达表达时间 慢（1-3 天） 快（1-2 天）滴度 滴度最高可达 10*8pfU/ml 滴度最高可达 10*11pfU/ml克隆容量 可插入不超过 8kb 的外源片段，滴度随插入片段长度增加而降低可插入高达
6、 8kb 的外源片段，滴度随插入片段长度增加而降低免疫原性 低免疫原性 高免疫原性2、构建目的基因到载体2.1 构建手段一般是根据原始质粒信息确定克隆方案，有以下两种手段。1）如果原始质粒与载体有匹配酶切位点，采用相应的内切酶切下相应片段，回收并连接到载体，酶切，并测序鉴定2）如果没有匹配的酶切位点，则设计带有特殊接头的引物进行 PCR 扩增，得到目的片段，采用相应的内切酶切下相应片段，回收并连接到穿梭载体，酶切，并测序鉴定2.2 质粒载体2.2.1 概念能够进行自主复制的环状 DNA 双链结构，包括真核生物的细胞器（主要指线粒体和叶绿体）中和细菌细胞拟核区以外的环状脱氧核糖核酸(DNA)分子
7、2.2.2 特征质粒上常有抗生素的抗性基因，例如，四环素抗性基因或卡那霉素抗性基因等。有些质粒称为附加体(episome)，这类质粒能够整合进真菌的染色体，也能从整合位置上切离下来成为游离于染色体外的 DNA 分子。质粒在宿主细胞体内外都可复制。通过个些特性，人们可以把一些目的 DNA 片断构建在质粒中，通过转化入大肠杆菌中，利用选择培养基来筛选从而不断的复制，来得到目的产物。3、质粒 DNA 在大肠杆菌里转化连接上目的基因的质粒转化大肠杆菌是为了让目的基因在大肠杆菌里扩增，然后提取质粒，以下是质粒 DNA 在大肠杆菌里转化的三步骤。3.1 大肠杆菌感受态细胞的制备1）从大肠杆菌平板上挑取一个
8、单菌落于 3mlLB 培养基的试管中，37振荡培养过夜。2）取 0.4ml 菌液转接到 40mlLB 液体培养基中，37振荡培养 23h3）菌液转移到 50ml 离心管中，冰上放置 10min4）4离心 10min（4000r/min）5）倒出培养液，将管口倒置以便培养液流尽6）用冰浴的 0.1mol/L 氯化钙 10ml 悬浮细胞沉淀，立即冰浴 30min7）4离心 10min（4000r/min）8）倒出上清液，用冰浴的 0.1mol/L 氯化钙 2ml 悬浮细胞（冰上放置）9）分装细胞，200ul 一份，4保存3.2 质粒 DNA 的转化1）取 200ul 新鲜制备的感受态细胞，加入质粒
9、 DNA2ul 混匀，冰浴 30min2）离心管放到 42保温 90s3）冰浴 2min4）每管加 800ulLB 液体培养基，37培养 1h（150r/min）5）取适当体积（100ul）的复苏细胞，涂布在选择性培养基上，正置 30min6）倒置平皿 37，1216h，出现菌落3.3 质粒提取步骤1）取 14ml 在 LB 培养基中培养过夜的菌液，12000 转离心 1min，弃上清2）加 250ul 溶液/RNaseA（溶液为细胞悬浮液）混合液，漩涡剧烈振荡直至菌体完全重新悬浮，室温静置 1-2min。3）加入 250ul 溶液（细胞裂解液） ，轻柔的反复颠倒混匀 5-6 次。室温放置 1
10、-2min，使菌体充分裂解，直至形成澄清的裂解溶液。4）加入 350ul 溶液（中和液） ，立刻轻柔地反复颠倒混匀 5-6 次，此时会出现白色絮状沉淀。5）12000 室温离心 10min，收集上清。6）将上清置于 DNA 纯化柱中，静置 1-2min。7）12000 转离心 1min，弃滤液。8）加入 500ul 溶液 PB（洗涤液）12000 转离心 1min，弃滤液，目的是将硅胶膜上吸附的蛋白、盐等杂质洗脱，以获得高质量质粒 DNA。9）加入 500ul 溶液 W（去盐液） ，12000 转离心 1min，弃滤液，重复一次。10） 12000 转离心 3min，以彻底去除纯化柱中残留的液
11、体。11）将 DNA 纯化柱置于新的离心管中，悬浮滴加 50-100ul 溶液 Eluent（为无菌的双蒸水，PH 为 8.0-8.5） ，室温放置 2min。12） 12000 转离心 1min，此时管底即为高纯度的质粒 DNA，质粒于-20保存。质粒提取步骤：吸取液体培养基于 1.5ml 离心管中 12000 转离心 1min，弃上清，吸取培养基重复离心弃上清离心，留取少量菌液作为菌种保存，可直接置于-20加250ulBufferS1 悬浮细菌，悬浮均匀 加 250ulBufferS2 温和充分的上下翻转 4-6 次混合均匀，使菌体裂解 加 350ulBufferS3 温和上下翻转 120
12、00 离心 10min取上清液转移到专用的制备管（2ml ）12000 转离心 1min，弃滤液加500ulBufferW112000 转离心 1min，弃滤液 加 500ulBufferW212000 转离心1min，弃滤液，重复一遍将制备管置回 2ml 离心管 12000 转离心 1min将制备管移入新的 1.5ml 离心管中，加 6080ulEluent 或离子水，室温 1min12000 转离心1min移去制备管，将有质粒的离心管于 4或是-20保存4、质粒 DNA 和其他包装质粒共转染 293T 细胞产生病毒（即病毒包装）4.1 名词解释4.1.1293T 细胞是由 293 细胞派生
13、, 表达 SV40 大 T 抗原的人肾上皮细胞系, 被广泛应用于瞬时转染以过表达各种目标蛋白, 或是用以包装病毒。4.1.2 脂质体：某些细胞质中的天然脂质小体，可作为生物膜，用于捕获外源性物质后更有效地运送到靶细胞，经同细胞融合而释放。4.2 共转染的操作步骤第一天：用无抗生素 DMEM+10%FBS 铺板 293FT 细胞，2ml/孔。确保第二天细胞密度达到 80%-90%融合度第二天：1. 500ul 无血清培养基稀释 2ug 表达质粒+1.5ug psPAX2+1.5ug pMD2.G 2. 500ul 无血清培养基稀释 15ul 脂质体 20003. 5min 后，将 DNA 溶液和
14、脂质体溶液混合，室温静止 20min 4. 从 6 孔板中吸出 1ml 无血清培养基，然后滴加入 1ml 质粒和脂质体混合物。5. 6-10h 后，移除含有 DNA-脂质体复合物的培养基，代之以正常培养液DMED+10%FB（从此刻开始算时间） 。第三天：1.转染 24h 后，荧光显微镜下观察，转染效率应达到 70%以上第四天：1.转染后 48 和 72h 分别收获含病毒的上清。2.3000 rpm 离心 20min，0.45um 滤膜过滤，去除细胞沉淀。3.12000 转离心浓缩细胞、分装-80C 贮存。4.滴度测定目的基因检定，并出具检测报告。4.3 病毒包装的原理质粒 DNA 为能转录出
15、慢病毒遗传物质（RNA ） ，但不能翻译出慢病毒的外壳及蛋白成分的载体质粒，其同时连有目的基因和报告基因，psPAX2 为能表达慢病毒外壳的质粒，其表达产物可通过粘附机制更易穿过细胞膜， pMD2.G 为慢病毒的膜蛋白质粒，通过 lipofectamine2000 进行三质粒共转到靶细胞基因组中，宿主基因组在表达时，随宿主基因转录出的目的基因 RNA 与 psPAX2、pMD2.G 基因翻译出的蛋白组装为慢病毒。在上述程序中提及的“第四天”收集病毒。在第五天再用该病毒感染靶细胞，病毒进入细胞后，其遗传物质 RNA 反转录出 DNA，该基因再整合到靶细胞的基因组中，完成转染过程，因为质粒 DNA
16、 只能转录出病毒 RNA 和表达目的基因却不能表达出病毒的外壳和膜蛋白成分，因此其不能像普通的病毒一样在宿主细胞能反复增殖，故对宿主细胞是无害的并且高效的将目的基因转然到靶细胞基因组中。5、慢病毒感染细胞5.1 流程图5.2 感染步骤1）铺板：将对数生长期的细胞消化重悬后，按 1*105/L 密度接种于 12 孔板，生长过夜2）感染：将 70-80%铺满 12 孔板中的培养液吸除，换新鲜的培养液，同时加入 PBS 浓度梯度稀释的病毒液，混合均匀后即可放入孵箱培养。3) 24h 左右可换液， 48 小时即可看荧光，具体根据细胞状态来看。5.3 荧光显微镜的操作流程打开荧光器（30min 内不能关闭，否则影响显微镜寿命） ，细胞培养板置于载物台，调节物镜和光圈，先用自然光观察视野内细胞，再关闭光，开启荧光通道，观察荧光强度，判定感染率。图片取样前可以调节曝光时间，增益值和彩色度使荧光照片最完美。 （
